3-10-2017, 19:43
L'industria produce vari tipi di fotometri a fiamma, diversi per caratteristiche di progettazione e scopo. Negli studi agrochimici, i fotometri a fiamma domestici PFM, PAZH-2, ecc., e i dispositivi Zeiss (GDR) Flafo-4, sono i più utilizzati.
Il principio di funzionamento dei fotometri a fiamma ad emissione è mostrato nella Figura 20. La soluzione di prova 1, sotto l'influenza della rarefazione che si verifica nell'iniettore quando l'aria si muove 2, viene aspirata attraverso il capillare da un vetro o una provetta ed entra sotto forma di un aerosol (nebbia) nella camera di miscelazione del bruciatore 4, dove viene miscelato con il gas caldo 3. La miscela viene alimentata nella fiamma del bruciatore 5 e brucia rilasciando una grande quantità di calore. Sotto l'influenza dell'energia risultante, il liquido evapora e gli elementi in esso contenuti vengono eccitati ed emettono energia luminosa di determinate lunghezze d'onda. Lo spettro di emissione, isolato mediante il monocromatore 6, è costituito da singole righe (per gli atomi) o da una serie di bande (per le molecole). L'intensità della radiazione dipende dalla natura e dalla concentrazione della sostanza in esame nella soluzione. Pertanto, l'entità della fotocorrente eccitata dalla radiazione quando colpisce la fotocellula o il fotomoltiplicatore 7 rifletterà il contenuto della sostanza nella soluzione in un certo intervallo.
Pertanto, la determinazione della concentrazione di una sostanza nella soluzione di prova si riduce al confronto delle letture del galvanometro (8) con le letture delle soluzioni di riferimento.
Il fotometro fotoelettrico a fiamma PFM (Fig. 21) è progettato per la determinazione quantitativa spettrofotometrica di fiamma di sodio, potassio, litio, cesio, rubidio, calcio, magnesio, stronzio, bario, boro, cromo e manganese. È progettato per utilizzare acetilene o gas naturale (metano, propano o butano), che consente di determinare sia gli elementi alcalini che quelli alcalino-terrosi con elevata precisione. Per isolare la radiazione di questi elementi vengono utilizzati filtri interferenziali.
Il dispositivo è costituito da un fotometro 1 e un alimentatore 2. L'unità fotometro contiene bruciatori 4, un monocromatore, un amplificatore, un milliamperometro 5, valvole per la regolazione del flusso di aria e gas, nonché manopole per impostare lo zero del milliamperometro e la sensibilità del dispositivo. L'alimentatore contiene un compressore con un ricevitore e un raddrizzatore stabilizzato.
Procedura operativa. Nonostante alcune differenze nella progettazione dei fotometri a fiamma del tipo PFM, la loro procedura operativa differisce in modo insignificante.
Prima di accendere il dispositivo, controllare attentamente le condizioni del sistema di alimentazione del gas e dell'aria. Per fare ciò, la valvola di ingresso situata sul fotometro viene chiusa, la valvola della bombola del gas viene aperta e la pressione nel sistema di alimentazione viene impostata entro 1-2 atm utilizzando il volantino del primo riduttore. Quindi la valvola della bombola viene chiusa ermeticamente e la posizione dell'indicatore del manometro viene controllata dal manometro del primo riduttore per 10-15 minuti.
Se la lancetta del manometro rimane nello stesso punto, la linea del gas è considerata in buone condizioni. Quando la pressione diminuisce, la perdita viene rilevata con l'aiuto di schiuma di sapone ed eliminata. Lo stesso vale per qualsiasi gas.
Per riportare il dispositivo in condizioni di funzionamento, è necessario quanto segue:
1) accendere il dispositivo in una rete 220 V;
2) impostare i diaframmi del flusso luminoso in posizione “Chiuso” e compensare la corrente di buio dell'apparecchio sulla scala di un milliamperometro finché la freccia non si allinea allo zero;
3) accendere il compressore 2 e utilizzare la maniglia 6 della valvola “Air” per impostare la pressione dell'aria nella rete entro l'intervallo 0,2-0,4 atm (20-40 kPa) utilizzando il manometro 8;
4) prima di fornire gas (propano o acetilene) al bruciatore, è necessario verificare le condizioni di accensione - quando si preme il pulsante 9 “Accensione”, una scintilla salta attraverso la finestra di ispezione;
5) per fornire gas (acetilene), aprire la valvola sulla bombola del gas, quindi, utilizzando la valvola 7 del fotometro "Gas", aumentare gradualmente la fornitura di gas combustibile, controllandone la pressione sul manometro. La pressione di esercizio del gas naturale (rete, propano, butano) deve essere di 40-80 mm di acqua. Art., e la pressione dell'acetilene - 100-200 mm di acqua. Arte. Se la pressione del gas raggiunge il valore specificato, premere il pulsante "Accensione" fino all'accensione della miscela combustibile;
6) regolando l'alimentazione (pressione) di gas e aria si ottiene una combustione stabile della fiamma. In questo caso il cono esterno della fiamma dovrà essere azzurro. Ad una pressione atmosferica di 0,3-0,4 atm, la pressione operativa ottimale per propano e gas di rete è di 50-60 mm di acqua. Art., per acetilene - 140-180 mm di acqua. Arte.
La modalità di funzionamento selezionata del bruciatore viene registrata nel diario e quando il dispositivo viene riacceso, viene impostata la stessa pressione del gas e dell'aria, poiché l'intensità della radiazione degli elementi e la sensibilità del dispositivo dipendono dalla modalità di funzionamento del bruciatore
La determinazione delle concentrazioni degli elementi in studio dovrebbe iniziare con la costruzione di un grafico di calibrazione per ciascun elemento utilizzando soluzioni standard di concentrazione nota. Per la loro preparazione vengono utilizzati sali ricristallizzati chimicamente puri.
Per costruire una curva di calibrazione, innanzitutto, la soluzione più concentrata di una data serie di soluzioni viene versata in un bicchiere e in esso viene immerso un capillare di campionamento, mentre l'ago del galvanometro devia di un certo numero di divisioni. La deviazione (intervallo) della freccia di 2/3 della scala di lavoro del dispositivo è considerata ottimale quando si misura la soluzione più concentrata. Se la freccia del milliamperometro devia in modo insufficiente o molto forte, viene prima impostata nell'intervallo ottimale utilizzando il diaframma (aumentando o diminuendo il flusso luminoso alla fotocellula) e, se questo fallisce, quindi cambiando la sensibilità del fotometro.
Quindi, quando vengono selezionate l'apertura e la sensibilità del dispositivo, viene introdotta acqua distillata nella fiamma del bruciatore e attraverso di essa l'ago del milliamperometro viene portato a zero mediante manopole di regolazione dello zero grossolano e fine. Soluzioni standard con una concentrazione nota e uniformemente crescente dell'elemento da determinare vengono introdotte alternativamente nella fiamma del bruciatore attraverso il capillare dell'atomizzatore. Per ogni concentrazione della soluzione, a seconda dello scostamento delle frecce del milliamperometro, viene rilevata la lettura della scala del dispositivo e registrata su un giornale. Le letture vengono effettuate 10-15 secondi dopo l'inizio della spruzzatura della soluzione successiva. Se le soluzioni differiscono notevolmente nella loro concentrazione, dopo ciascuna soluzione viene introdotta acqua distillata nella fiamma del bruciatore e viene controllata la posizione della freccia rispetto allo zero. Quando lo zero dello strumento si sposta, l'indice viene nuovamente corretto sullo zero utilizzando il potenziometro di regolazione fine dello zero milliamperometrico. Il numero di soluzioni standard varia solitamente da 6 a 8, il che consente di ottenere un numero di punti sufficiente per tracciare la curva del grafico di calibrazione. La concentrazione massima della soluzione di riferimento non deve essere inferiore alla possibile concentrazione della sostanza nelle soluzioni di prova.
Durante le misurazioni, la pressione del gas e dell'aria, nonché il grado di apertura del diaframma, devono essere gli stessi durante la misurazione delle soluzioni di riferimento e di prova.
Il grafico di calibrazione è costruito in base alle letture del galvanometro e alla concentrazione della soluzione di riferimento. Il grafico dovrebbe indicare la modalità di funzionamento del dispositivo: pressione del gas e dell'aria, il grado di apertura del diaframma, la posizione della manopola della sensibilità del dispositivo e, se necessario, altre informazioni. Quindi procedere alla determinazione della concentrazione della sostanza nelle soluzioni studiate. Per fare ciò, il capillare dell'atomizzatore viene nuovamente immerso in acqua distillata e il milliamperometro viene impostato su zero. Quindi, le soluzioni studiate vengono introdotte nella fiamma del bruciatore in una certa sequenza e, in base alla corrispondente deviazione della freccia, viene effettuata una lettura sulla scala del dispositivo.
Confrontando il valore delle letture ottenute con le letture delle soluzioni standard, la concentrazione dell'elemento nelle soluzioni studiate viene determinata dalla curva di calibrazione. La curva di calibrazione con una modalità di funzionamento costante del dispositivo può essere utilizzata a lungo, solo controllandola periodicamente rispetto a soluzioni di riferimento.
Dopo aver completato le misurazioni, sciacquare l'atomizzatore e il bruciatore con acqua distillata fino ad ottenere una fiamma incolore e quindi far funzionare l'apparecchio per qualche tempo senza acqua in modo da asciugare l'atomizzatore con un flusso di aria secca. Interrompere l'erogazione del gas chiudendo prima la valvola sulla bombola del gas e poi sul riduttore. Spegnere il compressore e l'alimentazione elettrica dell'apparecchio.
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BILANCIO DELLO STATO FEDERALE ISTITUTO EDUCATIVO DI ISTRUZIONE PROFESSIONALE SUPERIORE
"UNIVERSITÀ STATALE -
COMPLESSO DIDATTICO-SCIENTIFICO-PRODUTTIVO»
per disciplina
"Chimica analitica e metodi di analisi fisico-chimici"
sul tema "Fotometria di emissione della fiamma"
Eseguita:
studente del gruppo 11-TP
Kokhtenko E.P.
Insegnante:
k.x. Dottore di Ricerca, Professore Associato
Komova V.I.
introduzione
3. Errori
4. Schema di un fotometro a fiamma
Conclusione
Bibliografia
introduzione
Josef Fraunhofer (1787-1826) - fisico tedesco e famoso ottico - studiò la dispersione (il fenomeno della dipendenza della velocità della luce in una sostanza dalla frequenza o dalla lunghezza d'onda). Per effettuare misurazioni accurate della dispersione della luce nei prismi, Fraunhofer utilizzò una candela o una lampada come sorgente luminosa. Allo stesso tempo, scoprì una linea gialla brillante nello spettro, ora conosciuta come la linea gialla del sodio. Ben presto fu stabilito che questa linea si trova sempre nello stesso punto dello spettro e Fraunhofer suggerì che anche altri elementi avessero le stesse linee. In effetti, tutto si è rivelato così: ogni elemento della tabella chimica di D.I. Mendeleev può creare bande spettrali caratteristiche solo di questo elemento. Successivamente è stata compilata un'intera tabella di spettri. Tutto ciò ha portato allo sviluppo di un nuovo metodo di ricerca chimica, attualmente chiamato "analisi spettrale". analizzatore di fiamma fotometro ad emissione
Allo stato attuale della ricerca, l'analisi spettrale è un insieme di metodi per la determinazione qualitativa e quantitativa della composizione di un oggetto, basata sullo studio degli spettri dell'interazione della materia con la radiazione, compresi gli spettri della radiazione elettromagnetica, ecc. .
A seconda dello scopo dell'analisi e dei tipi di spettri, esistono diversi metodi di analisi spettrale. Le analisi spettrali atomiche e molecolari consentono di determinare rispettivamente la composizione elementare e molecolare di una sostanza. Nei metodi di emissione e assorbimento la composizione viene determinata dagli spettri di emissione e di assorbimento. Tutti questi metodi occupano un posto importante nell'arsenale della moderna chimica analitica, poiché hanno bassi limiti di rilevabilità e consentono la determinazione di tracce di impurità nei semiconduttori, materiali per l'ingegneria nucleare e optoelettronica.
determinare la composizione del materiale, poiché lo spettro della radiazione è diverso per ciascun elemento della tavola periodica di Mendeleev. Ad esempio, l'identificazione della composizione delle stelle in base alla loro luce.
determinazione di una sostanza chimica, insieme ad altri metodi.
quando si studiano oggetti astronomici (stelle, galassie, quasar, nebulose):
determinare il movimento degli oggetti e delle loro parti
ottenere informazioni sui processi fisici che si verificano in essi
ottenere informazioni sulla struttura dell'oggetto e sulla posizione delle sue parti.
1. Analisi fotometrica dell'emissione di fiamma
L'analisi fotometrica della fiamma ad emissione si basa sulla misurazione dell'intensità della radiazione degli atomi eccitati in una fiamma, un arco elettrico o una scintilla.
La soluzione analizzata viene introdotta nella fiamma del bruciatore; mentre inizialmente gli atomi della sostanza analizzata, assorbendo l'energia della fiamma, vengono eccitati, cioè alcuni dei loro elettroni si spostano verso orbitali più distanti dal nucleo. Ma poi, come risultato della transizione inversa degli elettroni, l'energia viene rilasciata sotto forma di radiazione di una certa lunghezza d'onda. Gli spettri risultanti sono chiamati spettri di emissione o spettri di emissione, da cui il nome del metodo, fotometria a emissione di fiamma.
Gli spettri di emissione di una fiamma sono abbastanza semplici e sono costituiti da più righe spettrali che differiscono per la lunghezza d'onda caratteristica di ciascun elemento. Ciò consente di distinguere i metalli analizzati mediante radiazione risonante, per utilizzare questi spettri non solo per analisi qualitative, ma anche quantitative. Quest'ultima si basa sul fatto che in un certo intervallo di concentrazione dell'analita, l'intensità dell'emissione di atomi è proporzionale al loro contenuto nella soluzione introdotta nella fiamma. La linea spettrale caratteristica dell'elemento viene isolata utilizzando un filtro luminoso, diretto verso una fotocellula, l'intensità della corrente che si è formata in essa viene misurata con un galvanometro e viene determinata l'intensità della radiazione. Il contenuto dell'elemento da determinare viene rilevato secondo la curva di calibrazione ottenuta per una serie di soluzioni standard.
L'analisi fotometrica delle emissioni di fiamma è ampiamente utilizzata nella ricerca agrochimica e del suolo, nell'industria chimica, nella biologia e nella medicina. Nel servizio agrochimico, il metodo viene utilizzato principalmente per determinare il contenuto di alcali (potassio, sodio), nonché di metalli alcalino-terrosi (magnesio, calcio, stronzio, bario), meno spesso di altri (manganese, rame).
Il metodo della fotometria di fiamma ad emissione è piuttosto sensibile. Per i metalli alcalini, la sensibilità raggiunge 0,1--0,01 μg su 372 ml di soluzione e per altri ~ 0,1--5 μg / ml. L'accuratezza delle determinazioni è compresa tra il 2 e il 4%.
Le determinazioni fotometriche della fiamma sono talvolta accompagnate da interferenze legate alla sovrapposizione dello spettro dell'elemento accompagnatore, alla radiazione del metallo da determinare o all'influenza di impurità estranee sull'intensità della radiazione. Tuttavia, queste interferenze vengono eliminate selezionando le soluzioni standard più adatte, nonché aggiungendo reagenti speciali.
Come in altri metodi fisici di analisi, nell'EFP si osserva l'influenza di vari fattori sull'entità del segnale analitico, che possono influenzare la correttezza dei risultati ottenuti. Le interferenze che portano alla distorsione del segnale analitico possono essere suddivise in 3 tipologie: strumentali (hardware), fisico-chimiche e spettrali.
Interferenza strumentale
L'interferenza strumentale è associata al funzionamento errato dei singoli componenti del dispositivo utilizzato. Ad esempio, il funzionamento instabile del compressore che fornisce aria compressa al bruciatore di un fotometro a fiamma provoca una variazione della velocità di spruzzatura della soluzione e influisce anche sulla temperatura della fiamma. La dipendenza non lineare della corrente di uscita del dispositivo dall'intensità del flusso luminoso può essere dovuta a un malfunzionamento del ricevitore di radiazioni e dell'amplificatore elettronico.
Interferenza fisico-chimica
Le interferenze fisiche e chimiche sono dovute all'influenza della composizione chimica della soluzione di prova sulla dispersione e sui processi che avvengono nella fiamma. Una caratteristica importante della qualità dell'aerosol risultante è il diametro medio delle goccioline.
Se la soluzione analizzata contiene composti che modificano sensibilmente una di queste proprietà (alte concentrazioni di acidi e sali, tensioattivi, solventi organici), si verificheranno inevitabilmente differenze nelle letture strumentali quando la fotometria della soluzione in esame e della soluzione acquosa di riferimento con esattamente la stessa concentrazione del elemento in corso di determinazione. Ad esempio, nelle soluzioni contenenti saccarosio e glicerolo, il segnale analitico diminuisce a causa dell'aumento della viscosità.
3. Errori
Per ridurre al minimo gli errori che si verificano nella fase di dispersione, è possibile utilizzare i seguenti metodi.
Innanzitutto mediante fotometria di soluzioni acquose diluite, ove possibile, in cui il contenuto di componenti della matrice non supera 1 g/L. Tuttavia, questa tecnica non può essere utilizzata nei casi in cui il contenuto del metallo da determinare nell'oggetto è basso.
In secondo luogo, utilizzando soluzioni di riferimento contenenti le stesse concentrazioni di componenti della matrice di quelle in studio. Questo metodo però non è applicabile se non si conosce la composizione dei macrocomponenti dell'oggetto. Il metodo più affidabile è il terzo: l'uso del metodo delle aggiunte, poiché in questo caso tutte le soluzioni studiate sono identiche nella composizione chimica e differiscono solo nel contenuto dell'elemento da determinare.
4. Schema di un fotometro a fiamma
I più utilizzati sono i fotometri a fiamma, che utilizzano bruciatori premiscelati con atomizzatore pneumatico. Lo specchio concavo serve ad aumentare il flusso luminoso diretto al ricevitore di radiazioni. Il diaframma, situato dopo il bruciatore, permette di emettere radiazione da determinate zone della fiamma. La separazione della riga spettrale analitica viene effettuata mediante filtri interferenziali montati su apposito tamburo. Ruotando il tamburo si posiziona il filtro luminoso desiderato nel percorso del flusso luminoso.
Di norma, una fotocellula a vuoto funge da ricevitore di radiazioni nei fotometri a fiamma, ma in numerosi modelli prodotti di recente vengono utilizzati fotodiodi a semiconduttore per questo scopo. La fotocorrente viene amplificata da un'unità elettronica e misurata da un milliamperometro. L'indice del dispositivo indicatore viene impostato a zero con un resistore variabile "Zero setting" durante la fotometria di una soluzione che non contiene l'elemento da determinare. Il diaframma a iride viene utilizzato per impostare l'intervallo della scala dello strumento. Ad esempio, quando si costruisce una dipendenza dalla calibrazione per una soluzione di riferimento con una concentrazione massima modificando l'apertura del diaframma, l'indice del dispositivo di lettura viene posizionato sul bordo della scala. L'interruttore "Attenuazione" modifica gradualmente il guadagno dell'unità elettronica, ad es. aumenta o diminuisce la sensibilità dello strumento.
La maggior parte dei fotometri a fiamma, compreso il PFM U4.2, sono stati prodotti secondo questo schema classico. La fonte di eccitazione dello spettro è una fiamma (propano, butano - aria o acetilene - aria). Il dispositivo è progettato per determinare i seguenti elementi: sodio (Na), calcio (Ca), potassio (K), stronzio (Sr), litio (Li), rubidio (Rb), cesio (Cs), bario (Ba), boro (B ), cromo (Cr), manganese (Mn) e magnesio (Mg).
Il fotometro a fiamma può essere utilizzato in medicina, industria alimentare, industria dei silicati, agricoltura, metallurgia, chimica e altri settori dell'economia nazionale, in istituti di ricerca e laboratori dove è necessario analizzare soluzioni contenenti gli elementi di cui sopra. Nel dispositivo vengono utilizzati filtri di luce interferenziale per isolare diverse porzioni dello spettro dalla fiamma.
5. Tipologie di fotometri a fiamma e loro caratteristiche
Nella pratica di laboratorio vengono utilizzati sia fotometri di fiamma con filtri luminosi che spettrofotometri per la fotometria di fiamma.
I fotometri a fiamma con filtri luminosi servono principalmente per la determinazione in soluzioni di potassio, sodio, calcio e talvolta litio, ad es. per l'analisi di oggetti di composizione semplice. Funzionano solitamente su una fiamma a bassa temperatura composta da miscele di gas combustibili con aria; i loro atomizzatori sono dotati di camere speciali per contenere grandi goccioline di aerosol che non evaporano nella fiamma. Nel nostro paese vengono prodotti i fotometri a fiamma dei marchi FPF-58, FPL-1 e PFM.
Gli spettrofotometri per la fotometria di fiamma sono più sensibili e forniscono un'elevata monocromatazione della radiazione. Sono dotati di bruciatori speciali per bruciare miscele di gas combustibili con ossigeno, e all'uscita dell'ugello i gas vengono miscelati, la soluzione analizzata viene iniettata direttamente nella fiamma. Il dispositivo PAZH-1 può servire come esempio di spettrofotometro per la fotometria di fiamma. -
Il fotometro a fiamma Zeiss (GDR) funziona con gas combustibili (acetilene, gas leggero, propano-butano, vapori di benzina) miscelati con aria, ma non con ossigeno. Sulle bombole del gas vengono fissati dei riduttori utilizzati in questo caso per ridurre la pressione del gas e mantenerla costante prima di introdurlo nel fotometro (uno specialista in saldatura ossitaglio collega i riduttori alle bombole). Questo apparecchio può funzionare anche con il gas naturale della rete, il che gli conferisce alcuni vantaggi. Il bruciatore è dotato di ugelli (griglie che impediscono il ritorno di fiamma) per la combustione di vari gas. Il fotometro Zeiss è dotato di un set di cinque filtri luminosi con i seguenti massimi di trasmissione luminosa (nm): per la determinazione del potassio 769,9. litio 678,8, calcio 622, sodio 589,9, magnesio 384. In genere, le determinazioni vengono effettuate utilizzando una curva di calibrazione.
Il fotometro a fiamma "FLAFO-4" (GDR) è progettato per determinare potassio, sodio e calcio nelle soluzioni; Funziona su fiamma composta da una miscela di propano e aria. Questo è un fotometro a doppio canale, che consente di determinare contemporaneamente due elementi in un campione. La sensibilità delle determinazioni su di esso è di 1 10 3 µg di potassio o sodio in 1 ml.
Il fotometro a fiamma "FLAFO-4" è dotato di filtri luminosi che trasmettono solo la radiazione delle linee analitiche caratteristiche dell'elemento da determinare. L'immagine della fiamma con l'aiuto di lenti viene proiettata sul ricevitore di radiazioni, che è una fotocellula al selenio. Il contenuto di elementi nella soluzione è determinato dalla curva di calibrazione.
Fotometro da laboratorio a fiamma FPL-1 - fotometro con filtro per la determinazione quantitativa di potassio, sodio e calcio nelle soluzioni; La fonte di eccitazione degli spettri è la fiamma di una miscela combustibile propano-butano-aria. Per evidenziare le linee spettrali degli elementi da determinare, vengono utilizzati filtri interferenti con massimi di assorbimento della luce (nm): per potassio 785, calcio 622 e sodio 589. La radiazione interferente viene assorbita dai filtri ad adsorbimento. La durata di una misurazione è di circa 30 s. Nel fotometro a fiamma FPL-1, il fotorilevatore è la fotocellula F-9 e il segnale di uscita viene registrato dall'amperometro puntatore M-266-M. I limiti inferiori di determinazione per potassio e sodio sono 0,5 µg/ml (o 5*10*5%) e per calcio 5 µg/ml (5*10`4%). Le definizioni vengono eseguite in base alle curve di calibrazione.
L'analizzatore di liquidi fotometrico a fiamma PAZh-1 (analizzatore di liquidi a fiamma) è prodotto dallo stabilimento di strumenti analitici di Kiev. Si tratta di un dispositivo moderno, molto avanzato (ma troppo complicato nel lavoro educativo) progettato per determinare le tracce di litio, sodio, potassio e calcio nelle soluzioni mediante spettrofotometria di fiamma.
Lo spettrofotometro di fiamma PAZh-1 viene utilizzato nelle centrali nucleari e termiche per l'analisi di acqua e combustibili. Funziona con miscele combustibili di propano - butano - aria o gas naturale - aria.
Questo dispositivo è composto da un analizzatore spettrofotometrico di fiamma, uno speciale compressore a membrana, un regolatore di pressione del gas, un riduttore della bombola del gas, una bombola di propano-butano e uno stabilizzatore di tensione; ha un sistema ottico complesso.
Il fotometro a fiamma PFA-378 è progettato per determinare la concentrazione in soluzioni di ioni di metalli alcalini e alcalino terrosi Na, K, Li, Ca misurando l'intensità delle loro linee di emissione quando si spruzza la soluzione analizzata nella fiamma di un bruciatore a gas. Inoltre - Sr, Cz, Rb, Va.
Tutti gli elementi vengono determinati simultaneamente nel campione e la loro concentrazione viene calcolata automaticamente utilizzando le calibrazioni archiviate nella memoria dell'analizzatore.
Una caratteristica distintiva dell'analizzatore è la capacità di controllare la temperatura della fiamma del gas durante il funzionamento. Il mantenimento di una temperatura della fiamma costante permette di non calibrare il dispositivo dopo ogni accensione. Quando si utilizzano diversi metodi di misurazione, è possibile memorizzare fino a 5 calibrazioni nella memoria dell'analizzatore per ciascun elemento da determinare.
L'analizzatore ha un interno memoria per 512 risultati di misurazione e possibilità di auto. avviare la misurazione e salvare il risultato. Ciò garantisce un'elevata produttività e determinazione della concentrazione di almeno 5 campioni al minuto. I risultati delle misurazioni accumulati nella memoria dell'analizzatore possono essere visualizzati sul suo indicatore interno, inviati su file su un computer tramite interfacce RS-232 o USB, scritti su una memoria flash, stampati su una stampante.
Area di applicazione.
L'analizzatore viene utilizzato nei settori della medicina, dell'energia, dell'agricoltura, dell'approvvigionamento idrico, dell'industria chimica, del vetro, metallurgica e di altro tipo.
In base alle condizioni operative in termini di impatto dei fattori climatici sull'ambiente, l'analizzatore appartiene alla versione UHL della categoria 4.2 secondo GOST 15150-69.
Principio di funzionamento.
Il funzionamento di un fotometro a fiamma si basa sul metodo della fotometria dell'emissione di elementi chimici in una fiamma. Una soluzione contenente l'elemento in studio viene introdotta sotto forma di aerosol nella fiamma di un bruciatore a gas. La radiazione di emissione degli elementi viene scomposta in uno spettro da un sistema ottico che utilizza un reticolo di diffrazione. La radiazione spettrale viene registrata da un ricevitore su una linea di fotodiodi. Il sistema a microprocessore del fotometro misura l'intensità delle linee di emissione degli elementi e visualizza i risultati della misurazione sull'indicatore in unità di concentrazione della soluzione di prova.
Il fotometro a fiamma utilizza una miscela di propano-butano come gas combustibile.
Aggiungere. capacità dell'analizzatore PFA-378, che vengono fornite su richiesta del cliente con add. tramite pagamento
Analisi di più elementi. Inoltre: Stronzio, Cesio, Rubidio, Bario.
Sensibilità di rilevamento degli elementi aumentata fino a 50 volte.
Possibilità di utilizzare metodi di misurazione speciali:
"Standard interno". Fornisce un'elevata precisione (non inferiore all'1,5% dell'errore relativo totale) e l'eliminazione degli errori "grossolani" (possibili a causa di modifiche incontrollate dei parametri, come l'intasamento dell'atomizzatore). Per implementare la tecnica, è necessario aggiungere altro alla soluzione. elemento. Fornisce la possibilità di definire contemporaneamente 2 o più elementi. Ad esempio: determinazione simultanea di Na e K in medicina.
"Includere soluzioni standard". Misurazione sequenziale di un campione e di due soluzioni standard - con concentrazioni più alte e più basse. Con 5 misurazioni consecutive, una precisione non inferiore all'1% del totale rel. errori. Le prestazioni elevate (non inferiori a 10 volte rispetto ad altri fotometri a fiamma) sono fornite da ed. trigger e calcolo del risultato della misurazione.
"Metodi utente" - determinazione simultanea di più elementi e calcolo automatico del risultato della misurazione (ad esempio, per eliminare la matrice di influenza degli elementi, implementazione del metodo "additivi", ecc.)
Collegamento ad un PC esterno per la memorizzazione e l'elaborazione dei risultati delle misurazioni e delle calibrazioni: 4.1 Collegamento diretto via cavo alla porta RS232 o USB del PC. 4.2 Attraverso la memoria flash.
Intervallo di determinazione della concentrazione esteso: da 0,01 µg/l a 1 g/l (ovvero un aumento dell'intervallo di registrazione da 200 a 100 mila volte).
Riduzione del consumo di campione per 1 misurazione fino a 5 volte (fino a 0,5 ml per misurazione).
Conclusione
Quindi, grazie al fisico tedesco e famoso ottico Josef Fraunhofer, è stata compilata un'intera tabella di spettri. Questo e molto altro portarono allo sviluppo di un nuovo metodo di ricerca chimica, che attualmente viene chiamato "analisi spettrale". L'analisi spettrale è una combinazione di molti metodi chimici di analisi, uno dei quali è la fotometria di fiamma.
In conclusione, vorrei elencare i pro e i contro di questo metodo. I vantaggi includono la capacità di condurre analisi sia qualitative che quantitative. L'analisi qualitativa della fotometria dell'emissione di fiamma determina più di 80 elementi con un limite di rilevazione dal 10-2% (Hg, Os, ecc.) al 10-5% (Na, B, Bi, ecc.). Un limite di rilevamento basso può portare alla riscoperta di elementi che sono entrati nel campione a seguito di una contaminazione accidentale. Il quantitativo si basa sulla concentrazione dell'analita iniettato nella fiamma. I metodi di fotometria di fiamma possono essere utilizzati per studiare campioni solidi e liquidi.
Ora, nelle condizioni moderne, gli scienziati sono riusciti a ridurre l'errore e l'interferenza degli spettrometri di fiamma, il che rende questo metodo ancora più efficiente e automatizzato. Sui modelli moderni di spettrofotometri, i risultati si ottengono più velocemente rispetto ai modelli precedenti.
Oltre all'efficacia di questo metodo, puoi notare la sua bellezza, perché lavorare con spettri multicolori è molto interessante e divertente che risolvere noiose equazioni e derivare formule.
Bibliografia
1. Vasiliev V.P. Chimica analitica. Libro 2: Metodi di analisi fisici e chimici. - M.: Otarda, 2004. - 383 p.
2. Poluektov N.S. Metodi di analisi fotometria di fiamma. - M.: Nauka, 1967.
3. Kuzyakov Yu.Ya. e altri metodi di analisi spettrale. - M., 1990.
4. Tsitovich I.K. Corso di Chimica Analitica: Libro di testo 10a ed., Sr. - San Pietroburgo: Casa editrice "Lan", 2009. -t.496s.: ill. - (Libri di testo universitari, Letterature speciali)
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La trasfusione di sangue è l'introduzione nel flusso sanguigno di un paziente (ricevente) del sangue di un'altra persona (donatore). Tentativi di trasfusione di sangue da una persona all'altra furono fatti già nel XVII secolo, ma questa operazione ricevette la sua giustificazione scientifica e divenne sicura solo all'inizio del XX secolo, quando fu scoperta la legge dell'isoagglutinazione, sulla base della quale tutte le persone sono state divise in quattro gruppi in base alle proprietà emoagglutinanti del sangue.
Lo sviluppo della dottrina della trasfusione del sangue e dei sostituti del sangue (trasfusiologia) è indissolubilmente legato ai nomi degli scienziati russi e sovietici: A. M. Filomafitsky, I. V. Buyalsky, S. I. Spasokukotsky, V. N. Shamov, N. N. Burdenko e altri .
Gruppi sanguigni.
Numerosi studi hanno dimostrato che il sangue può contenere diverse proteine (agglutinogeni e agglutinine), la cui combinazione (presenza o assenza) forma quattro gruppi sanguigni.
Ad ogni gruppo viene assegnato un simbolo: 0 (IO),
A(II),IN(III)AB(IV).
È stato stabilito che è possibile trasfondere solo il sangue di un gruppo. In casi eccezionali, quando non è disponibile sangue di un gruppo e la trasfusione è vitale, è consentito trasfondere sangue di un altro gruppo.
In queste condizioni, il sangue 0 ( IO) i gruppi possono essere trasfusi a pazienti con qualsiasi gruppo sanguigno e a pazienti con sangue AB(IV)
gruppi, è possibile trasfondere il sangue donato di qualsiasi gruppo.
La trasfusione di sangue con incompatibilità di gruppo porta a gravi complicazioni e alla morte del paziente!
- Pertanto, prima di iniziare una trasfusione di sangue, è necessario stabilirlo con precisione gruppo sanguigno del paziente E gruppo sanguigno trasfuso, fattore Rh.
- Prima di ogni trasfusione di sangue, ad eccezione della determinazione del gruppo sanguigno e del fattore Rh, produrre test di compatibilità individuale e biologica.
Il test di compatibilità individuale viene eseguito come segue.
2 gocce del siero sanguigno del paziente vengono aggiunte alla capsula Petri, a cui viene aggiunta una goccia di sangue trasfuso, e vengono accuratamente miscelate. Il risultato viene valutato dopo 10 minuti. Se non c'è agglutinazione, il sangue è individualmente compatibile e può essere trasfuso al paziente.
Al momento della trasfusione di sangue viene effettuato un test di biocompatibilità. Dopo che il sistema trasfusionale è stato collegato alla fiala, riempita di sangue e fissata ad un ago situato nel lume del vaso (vena, arteria), viene avviata un'infusione a getto di 3-5 ml di sangue e le condizioni del paziente vengono monitorate per diversi minuti. Se non si verificano reazioni avverse (mal di testa, dolori alla zona lombare, al cuore, soffocamento, arrossamento della pelle, brividi, ecc.), il sangue deve essere riconosciuto come biologicamente compatibile e si può eseguire una trasfusione di sangue. Se si verifica una reazione durante il test o durante l'operazione, la trasfusione di sangue deve essere interrotta immediatamente.
Metodi di trasfusione del sangue.
La trasfusione di sangue può essere diretta quando il sangue del donatore aspirato nella siringa viene immediatamente iniettato immodificato nel flusso sanguigno del ricevente, e indiretto in cui il sangue di un donatore viene prelevato anticipatamente in un vaso con una soluzione che impedisce la coagulazione del sangue e quindi trasfuso al ricevente dopo un po'.
Il metodo diretto è complesso, viene utilizzato in rari casi, per indicazioni particolari. Il metodo indiretto è molto più semplice, consente di creare scorte di sangue, regolare facilmente la velocità di trasfusione, il volume di sangue infuso, trasfondere in diverse condizioni (ad esempio in ambulanza, aeroplani, ecc.) ed evitare molte complicazioni possibili con il metodo diretto.
Puoi trasfondere il sangue in un'arteria, una vena, un midollo osseo.
Secondo il metodo di somministrazione, si distinguono la trasfusione di sangue a goccia e a getto.
L'iniezione di sangue intraarteriosa viene eseguita durante la rianimazione nei casi in cui è necessario compensare rapidamente la perdita di sangue, aumentare la pressione e stimolare l'attività del cuore. La trasfusione di sangue endovenosa più comunemente utilizzata. Se è impossibile perforare la vena, la trasfusione viene effettuata per via intraossea (sterno, calcagno, ilio).
Indicazioni per la trasfusione di sangue.
- Anemia acuta: il sangue trasfuso ripristina la normale quantità di emoglobina, eritrociti, volume normale di sangue circolante. Con una grande perdita di sangue, a volte vengono trasfusi fino a 2-3 litri di sangue.
- Shock: la trasfusione migliora l'attività cardiaca, aumenta il tono vascolare, la pressione sanguigna e nelle operazioni gravi previene lo sviluppo di shock traumatico chirurgico.
- Malattie croniche debilitanti, intossicazioni, malattie del sangue: il sangue trasfuso stimola i processi ematopoietici, aumenta le funzioni protettive dell'organismo e riduce le intossicazioni.
- Avvelenamento acuto (veleni, gas): il sangue ha buone proprietà disintossicanti, riduce drasticamente gli effetti dannosi dei veleni.
- Disturbi della coagulazione del sangue: la trasfusione di piccole dosi di sangue (100-150 ml) ne aumenta le proprietà coagulative.
Controindicazioni alla trasfusione di sangue:
- gravi malattie infiammatorie dei reni, del fegato,
- difetti cardiaci non compensati,
- emorragia cerebrale,
- forma infiltrativa di tubercolosi polmonare, ecc.
Donazione.
Una persona che dona parte del proprio sangue è chiamata donatore. Può essere donatore qualsiasi persona sana di età compresa tra 18 e 55 anni. La stragrande maggioranza del sangue donato utilizzato per la cura degli uomini liberi nel nostro Paese viene donato gratuitamente dai donatori. Molte migliaia di cittadini sani, adempiendo al loro alto dovere civico, donano ripetutamente il sangue.
Nel nostro Paese il sangue viene raccolto nelle stazioni trasfusionali, nelle sale trasfusionali dei grandi ospedali e negli istituti di ricerca specializzati.
La festività “Giornata Internazionale del Donatore” è stata istituita dall'Assemblea Mondiale della Sanità nel maggio 2005, durante la 58a sessione di Ginevra. La Giornata del Donatore si celebra ogni anno il 14 giugno, poiché in questo giorno è nato il vincitore del Premio Nobel per la scoperta dei gruppi sanguigni umani, Karl Landsteiner. Coloro che hanno donato il sangue gratuitamente più di 30 volte ricevono il titolo di Donatore Onorario della Russia e ricevono un distintivo. Un donatore onorario riceve anche benefici e pagamenti.
In URSS, le “Giornate dei Donatori” erano ampiamente praticate anche nelle imprese, nelle istituzioni e nelle università. In questi casi il prelievo di sangue è stato effettuato in apposite sale operatorie mobili presso il luogo di lavoro o di studio dei donatori.
Metodi e tecniche per la trasfusione del sangue e dei suoi componenti
La trasfusione (trasfusione) di componenti del sangue (vettori di gas nel sangue contenenti eritrociti, correttori plasmatici e piastrinici dell'emostasi e fibrinolisi, agenti di correzione dell'immunità plasmatica contenenti leucociti) è un metodo terapeutico che consiste nell'introdurre nel flusso sanguigno del paziente ( ricevente) questi componenti preparati dal donatore o dal ricevente stesso (autodonazione), nonché il sangue e i suoi componenti versati nella cavità corporea durante lesioni e operazioni (reinfusione).
L'operazione di trasfusione di emocomponenti è accompagnata da conseguenze per il ricevente, sia positive (aumento del numero di eritrociti circolanti, aumento del livello di emoglobina durante la trasfusione di eritrociti, sollievo della coagulazione intravascolare disseminata acuta durante la trasfusione di sangue fresco congelato plasma, cessazione del sanguinamento trombocitopenico spontaneo, aumento del numero di piastrine durante la trasfusione di concentrato piastrinico) e negativo (rifiuto degli elementi cellulari e plasmatici del sangue del donatore, rischio di infezione virale e batterica, sviluppo di emosiderosi, inibizione dell’ematopoiesi, aumento della trombogenicità, allosensibilizzazione, reazioni immunologiche). Nei pazienti immunodepressi, la trasfusione di componenti cellulari del sangue può portare allo sviluppo della malattia del trapianto contro l’ospite.
Quando si trasfonde sangue intero in scatola, soprattutto per periodi di conservazione a lungo termine (più di 7 giorni), il ricevente riceve, insieme ai componenti necessari, piastrine funzionalmente difettose, prodotti di decadimento dei leucociti, anticorpi e antigeni, che possono causare reazioni post-trasfusionali e complicazioni.
Attualmente è stato stabilito il principio della compensazione per specifici componenti del sangue mancanti nel corpo del paziente in varie condizioni patologiche. Non ci sono indicazioni per la trasfusione di sangue intero in scatola da donatore, ad eccezione dei casi di perdita di sangue massiva acuta, quando non sono disponibili sostituti del sangue o plasma fresco congelato, massa eritrocitaria o sospensione. Il sangue intero in scatola viene utilizzato per la trasfusione sostitutiva nel trattamento della malattia emolitica del neonato.
Il sangue dei donatori presso le stazioni trasfusionali (BTS) o i reparti trasfusionali nelle ore successive al ricevimento (a seconda del conservante utilizzato e delle condizioni di approvvigionamento - sul campo o stazionario) deve essere suddiviso in componenti. Si consiglia di utilizzare componenti del sangue preparati da uno o da un numero minimo di donatori nel trattamento di un paziente.
Per prevenire complicazioni post-trasfusionali causate dall'antigene Kell, i reparti e le stazioni trasfusionali rilasciano alla clinica una sospensione o una massa di eritrociti che non contiene questo fattore per la trasfusione. I destinatari Kell positivi possono essere trasfusi con globuli rossi Kell positivi. Quando si trasmettono correttori per l'emostasi della coagulazione del plasma (tutti i tipi di plasma), concentrato piastrinico, concentrato leucocitario, l'antigene Kell non viene preso in considerazione.
Gli emocomponenti devono essere trasfusi solo del gruppo del sistema AB0 e dell'accessorio Rh di cui è dotato il ricevente.
Secondo indicazioni vitali e in assenza di componenti sanguigni dello stesso gruppo secondo il sistema AB0 (ad eccezione dei bambini), è consentita la trasfusione di gruppi sanguigni Rh-negativi 0 (I) al ricevente con qualsiasi altro gruppo sanguigno in una quantità fino a 500 ml. La massa o la sospensione di eritrociti Rh negativi di donatori del gruppo A(II) o B(III), secondo le indicazioni vitali, possono essere trasfuse a un ricevente del gruppo AB(IV), indipendentemente dalla sua affiliazione Rh. In assenza di plasma del gruppo singolo, il ricevente può essere trasfuso con plasma del gruppo AB (IV).
In tutti i casi, senza eccezione, di trasfusione di componenti del sangue contenenti eritrociti, è assolutamente obbligatorio effettuare test di compatibilità individuale prima dell'inizio della trasfusione e all'inizio della trasfusione di un campione biologico.
Quando un paziente viene ricoverato in ospedale in modo pianificato, il gruppo sanguigno AB0 e l'affiliazione Rh vengono determinati da un medico o da un altro specialista esperto in immunosierologia. Il modulo con il risultato dello studio viene incollato nell'anamnesi. Il medico curante riscrive i dati del risultato dello studio sul frontespizio della storia medica nell'angolo in alto a destra e li appone con la sua firma. È vietato trasferire dati sul gruppo sanguigno e sull'affiliazione Rh da altri documenti al frontespizio della storia medica.
I pazienti con una storia di complicazioni post-trasfusionali, le gravidanze che terminano con la nascita di bambini con malattia emolitica del neonato, così come i pazienti con anticorpi alloimmuni, vengono selezionati individualmente i componenti del sangue in un laboratorio specializzato. Se sono necessarie trasfusioni multiple in pazienti con mielodepressione o sindrome aplastica, viene esaminato il fenotipo del paziente per selezionare un donatore appropriato.
La trasfusione di componenti del sangue ha il diritto di essere eseguita dal medico curante o di guardia con formazione specifica, durante l'operazione - dal chirurgo o dall'anestesista che non è direttamente coinvolto nell'operazione o nell'anestesia, nonché dal medico di il reparto o l'ambulatorio trasfusionale, lo specialista in trasfusioni.
Prima di procedere alla trasfusione degli emocomponenti è necessario assicurarsi che siano idonei alla trasfusione, che i gruppi donatore e ricevente siano identici secondo i sistemi AB0 e Rh. Visivamente, direttamente dal medico che versa il mezzo trasfusionale, vengono verificate la tenuta della confezione, la correttezza della certificazione, la qualità del mezzo emotrasfusionale viene valutata macroscopicamente. È necessario determinare l'idoneità del mezzo trasfusionale con un'illuminazione sufficiente direttamente nel luogo di conservazione, evitando l'agitazione. Criteri di validità per la trasfusione sono: per il sangue intero - trasparenza del plasma, uniformità dello strato superiore degli eritrociti, presenza di un chiaro confine tra eritrociti e plasma; per plasma fresco congelato - trasparenza a temperatura ambiente. Con possibile contaminazione batterica del sangue intero, il colore del plasma sarà opaco, con una tinta grigio-marrone, perde la sua trasparenza, in esso appaiono particelle sospese sotto forma di scaglie o pellicole. Tali mezzi per trasfusione di sangue non sono soggetti a trasfusione.
È vietato trasfondere componenti del sangue che non siano stati precedentemente testati per l'HIV, l'epatite B e C, la sifilide.
Il trasporto degli emocomponenti viene effettuato esclusivamente da personale medico responsabile del rispetto delle norme di trasporto. Gli emocomponenti, per evitare emolisi durante il trasporto, non devono essere sottoposti ad ipotermia o surriscaldamento. Con un tempo di trasporto inferiore a 30 minuti, può essere effettuato utilizzando qualsiasi contenitore che garantisca sufficiente isotermità. Con una durata di trasporto superiore a mezz'ora, gli emocomponenti devono essere conservati in un contenitore isotermico (borsa frigo). Per trasporti ancora più lunghi (diverse ore) o con temperature ambiente elevate (superiori a 20°C), è necessario utilizzare ghiaccio secco o accumulatori di freddo per garantire condizioni isotermiche nel contenitore di spedizione. È necessario proteggere i componenti del sangue da scosse, urti, ribaltamenti e surriscaldamento e i componenti cellulari dal congelamento.
Il medico che esegue la trasfusione di emocomponenti è obbligato, indipendentemente dagli studi precedenti e dai documenti disponibili, a condurre personalmente i seguenti studi di controllo direttamente al letto del ricevente:
1.1. Ricontrollare il gruppo sanguigno del ricevente secondo il sistema AB0, confrontare il risultato con i dati dell'anamnesi;
1.2. Ricontrollare il gruppo sanguigno secondo il sistema AB0 del contenitore del donatore e confrontare il risultato con i dati riportati sull'etichetta del contenitore;
1.3. Confrontare il gruppo sanguigno e l'affiliazione Rh indicati sul contenitore con i risultati dell'esame precedentemente inseriti nell'anamnesi e appena ricevuti;
1.4. Condurre test di compatibilità individuale secondo i sistemi AB0 e Rh degli eritrociti del donatore e del siero del ricevente;
1.5. Chiarire il cognome, nome, patronimico, anno di nascita del destinatario e confrontarli con quelli indicati sul frontespizio della storia medica. I dati devono corrispondere e il ricevente deve, se possibile, confermarli (tranne nei casi in cui la trasfusione viene eseguita in anestesia o il paziente è incosciente);
1.6. Condurre un test biologico;
1.7. Un prerequisito necessario per l'intervento medico è il consenso volontario informato del cittadino ai sensi dell'articolo 32 dei "Fondamenti della legislazione della Federazione Russa sulla protezione dei cittadini" del 22 luglio 1993 N 5487-1 (Bollettino dell'SND e le Forze Armate della Federazione Russa del 19 agosto 1993, N 33, articolo 1318).
Nei casi in cui le condizioni di un cittadino non gli consentono di esprimere la propria volontà e l'intervento medico è urgente, la questione della sua attuazione nell'interesse del cittadino viene decisa da un consiglio e, se è impossibile convocare un consiglio - direttamente dal medico curante (di turno), seguito dalla notifica ai funzionari dell'istituto medico.
Il piano per l'operazione di trasfusione di emocomponenti viene discusso e concordato per iscritto con il paziente e, se necessario, con i suoi parenti. Il consenso del paziente viene redatto in conformità al campione e archiviato nella scheda di ricovero o nella scheda ambulatoriale.
La trasfusione dei mezzi trasfusionali del sangue viene effettuata da personale medico nel rispetto delle regole di asepsi e antisepsi utilizzando dispositivi monouso per somministrazione endovenosa con filtro.
Al fine di prevenire reazioni immunologiche in un determinato gruppo di pazienti (bambini, donne incinte, persone con immunosoppressione), la trasfusione di massa e sospensione eritrocitaria, concentrato piastrinico deve essere effettuata utilizzando speciali filtri leucocitari approvati per uso clinico dal Ministero della Salute della Federazione Russa.
2.1. Studi immunosierologici durante trasfusione di sangue, correttori dell'emostasi e fibrinolisi, mezzi per correggere l'immunità
Durante la trasfusione di eritrociti, correttori dell'emostasi e fibrinolisi, mezzi di correzione dell'immunità (pianificata, di emergenza), il medico che esegue la trasfusione deve:
2.1. Determinare il gruppo sanguigno AB0 e l'affiliazione Rh del ricevente e del donatore (mediante i globuli rossi nel contenitore).
2.2. Effettuare un test per la compatibilità individuale del sangue del ricevente e del donatore (vedi sotto) in due modi:
Il primo metodo: un test in due fasi in provette con antiglobulina;
Il secondo metodo: su un piano a temperatura ambiente e uno dei tre campioni (reazione di Coombs indiretta, reazione di conglutinazione con gelatina al 10% o reazione di conglutinazione con poliglucina al 33%).
In base alle indicazioni vitali, se il gruppo sanguigno e l'affiliazione Rh del ricevente non sono noti, il medico che esegue la trasfusione può trasfondere il ricevente con sangue (massa eritrocitaria, sospensione) del gruppo 0 (I) Rh negativo con test obbligatori di compatibilità individuale e test biologici.
Tecnica degli studi immunosierologici
3.1. Determinazione del gruppo sanguigno AB0
3.2. Definizione di affiliazione Rh
La determinazione del gruppo sanguigno, l'affiliazione Rh, un test per la compatibilità individuale del sangue del donatore e del ricevente viene effettuato secondo le istruzioni per l'immunosierologia. Sono inoltre guidati dalle istruzioni-allegati allegati al kit di reagenti dal produttore. Gli eritrociti e il siero sanguigno del ricevente vengono conservati per un periodo massimo di due giorni ad una temperatura di +2 - 8°C.
Per il metodo di agglutinazione sull'aereo e il metodo di conglutinazione in provette con gelatina al 10% o poliglucina al 33%, viene prelevato un sedimento di eritrociti non lavati.
Per il test a due fasi in provette per immunoglobuline e per il test di Coombs indiretto, gli eritrociti vengono lavati tre volte con soluzione salina. Il lavaggio degli eritrociti viene effettuato nel solito modo.
3.1. Determinazione del gruppo sanguigno AB0
Aggiungere 2 gocce (0,1 ml) del reagente e una goccia di sedimento eritrocitario (0,01 - 0,02 ml quando si utilizzano sieri emoagglutinanti; 0,02 - 0,03 ml quando si utilizzano colicloni). Siero ed eritrociti vengono miscelati con una bacchetta di vetro. La piastra viene periodicamente agitata, osservando l'andamento della reazione per 3 minuti quando si utilizzano colicloni; 5 minuti quando si utilizzano sieri emoagglutinanti. Dopo 5 minuti è possibile aggiungere alla miscela di reazione 1 - 2 gocce (0,05 - 0,1 ml) di soluzione fisiologica per rimuovere eventuali aggregazioni aspecifiche di globuli rossi.
Contabilità dei risultati della determinazione del gruppo sanguigno AB0 (con colicloni)
Contabilità dei risultati della determinazione del gruppo sanguigno AB0 (utilizzando sieri isoemoagglutinanti standard)
Contabilità dei risultati della determinazione del gruppo sanguigno AB0 (usando il metodo incrociato)
Nota: il segno (+) indica agglutinazione, il segno (-) indica assenza di agglutinazione.
Alla presenza di agglutinazione con tutti e tre i reagenti, è necessario escludere l'agglutinazione non specifica degli eritrociti studiati. Per fare ciò, una goccia di soluzione salina viene aggiunta a una goccia di eritrociti invece di colicloni e invece di emoagglutinare i sieri viene aggiunto siero del gruppo AB (IV). Il sangue può essere assegnato al gruppo AB(IV) solo in assenza di agglutinazione eritrocitaria in soluzione salina o siero AB(IV).
3.2. Definizione di affiliazione Rh
3.2.1. Metodo espresso:
1 goccia di siero anti-Rhesus e 1 goccia del sangue da analizzare vengono aggiunte al fondo della provetta, vengono miscelate, la provetta viene capovolta in modo che il contenuto si diffonda lungo la parete. Dopo 5 minuti verificare la presenza di agglutinazioni. Per escludere una falsa aggregazione degli eritrociti è necessario aggiungere 2-3 ml di soluzione salina. La presenza di agglutinazione: il sangue è Rh positivo.
3.2.2. Reazione di agglutinazione piana con super colicloni anti-D:
Applicare una goccia abbondante (circa 0,1 ml) del reagente sulla piastra o sulla piastra. Nelle vicinanze viene applicata una piccola goccia (0,02-0,03 ml) degli eritrociti studiati. Miscelare accuratamente il reagente con gli eritrociti con una bacchetta di vetro.
Dopo 10-20 secondi agitare delicatamente la piastra. Sebbene nei primi 30 s si verifichi una chiara agglutinazione, i risultati della reazione vengono presi in considerazione 3 minuti dopo la miscelazione.
In presenza di agglutinazione, il sangue analizzato viene contrassegnato come Rh positivo, in assenza - come Rh negativo.
Per determinare l'appartenenza Rh con un metodo accelerato su un aereo a temperatura ambiente, possono essere utilizzati sieri policlonali anti-D con anticorpi incompleti preparati in combinazione con colloidi (albumina, poliglucina).
3.2.2 Metodo di conglutinazione con gelatina al 10%:
Utilizzare reagenti contenenti anticorpi policlonali incompleti (sieri anti-D) o anticorpi monoclonali incompleti (zolicloni anti-D).
0,02 - 0,03 ml di sedimento eritrocitario vengono aggiunti a 2 provette, per le quali una piccola goccia di eritrociti viene spremuta dalla pipetta e con essa tocca il fondo della provetta. Quindi aggiungere 2 gocce (0,1 ml) di gelatina e 2 gocce (0,1 ml) di reagente alla prima provetta, 2 gocce (0,1 ml) di gelatina e 2 gocce (0,1 ml) di reagente alla seconda ( provetta di controllo) soluzione fisiologica.
Il contenuto delle provette viene miscelato mediante agitazione, dopodiché viene posto a bagnomaria per 15 minuti o in un termostato per 30 minuti ad una temperatura di +46 - 48°C. Dopo il tempo specificato, alle provette vengono aggiunti 5-8 ml di soluzione salina e il contenuto viene miscelato capovolgendo le provette di 1-2 volte.
Il risultato viene preso in considerazione osservando i tubi alla luce ad occhio nudo o attraverso una lente d'ingrandimento. L'agglutinazione degli eritrociti indica che il campione di sangue analizzato è Rh positivo, l'assenza di agglutinazione indica che il sangue analizzato è Rh negativo. Non deve esserci agglutinazione degli eritrociti nella provetta di controllo.
Per determinare l'affiliazione Rh con il metodo accelerato in una provetta a temperatura ambiente, è possibile utilizzare un reagente universale, che è un siero anti-D con anticorpi incompleti, diluito con poliglucina al 33%.
4. Test di compatibilità sanguigna individuale del donatore e del ricevente
4.1. Test a due stadi in provette con antiglobulina
4.2. Test di compatibilità flat a temperatura ambiente
4.3. Test di Coombs indiretto
4.4. Test di compatibilità utilizzando gelatina al 10%.
4.5. Test di compatibilità utilizzando poliglucina al 33%.
Il test di compatibilità individuale consente di accertarsi che il ricevente non abbia anticorpi diretti contro gli eritrociti del donatore e quindi di prevenire la trasfusione di eritrociti incompatibili con il sangue del paziente.
Il test di compatibilità, eseguito su un aereo a temperatura ambiente, ha lo scopo di identificare negli anticorpi del gruppo ricevente le agglutinine del gruppo completo del sistema AB0, MNS, Lewis, ecc. Un test a due fasi in provette con antiglobulina prevede la rilevazione di entrambi gli anticorpi, comprese le emolisine del gruppo.
Il più sensibile e consigliato è un test a due fasi in provette con antiglobulina, quindi una combinazione di due test: un test su un aereo a temperatura ambiente e un test di Coombs indiretto. Invece del test di Coombs indiretto, è possibile utilizzare un test di conglutinazione con il 10% di gelatina o un test di conglutinazione con il 33% di poliglucina. L'ultimo test ha una sensibilità inferiore ai primi due, ma richiede meno tempo.
4.1. Test a due stadi in provette con antiglobulina
Primo stadio. 2 volumi (200 μl) del siero del ricevente e 1 volume (100 μl) di una sospensione al 2% di eritrociti del donatore sottoposti a triplo lavaggio sospesi in soluzione salina o LISS (soluzione a bassa forza ionica) vengono aggiunti a una provetta etichettata. Il contenuto della provetta viene miscelato e centrifugato a 2500 giri/min (circa 600 g) per 30 s. Successivamente, viene valutata la presenza di emolisi nel surnatante, dopodiché il sedimento eritrocitario viene risospeso picchiettando leggermente il fondo della provetta con la punta del dito e viene determinata la presenza di agglutinazione eritrocitaria. In assenza di emolisi pronunciata e/o agglutinazione, si procede alla seconda fase del test utilizzando siero antiglobulina.
Seconda fase. La provetta viene posta in termostato alla temperatura di 37°C per 30 minuti, dopodiché viene nuovamente valutata la presenza di emolisi e/o agglutinazione degli eritrociti. Successivamente gli eritrociti vengono lavati tre volte con soluzione fisiologica, vengono aggiunti e miscelati 2 volumi (200 μl) di siero antiglobulina per il test di Coombs. Le provette vengono centrifugate per 30 s, il sedimento eritrocitario viene risospeso e viene valutata la presenza di agglutinazione.
Contabilità dei risultati effettuata ad occhio nudo o attraverso una lente di ingrandimento. Una pronunciata emolisi e/o agglutinazione degli eritrociti indica la presenza nel siero del ricevente di gruppi emolitici e/o agglutinine dirette contro gli eritrociti del donatore e indica l'incompatibilità del sangue del ricevente e del donatore. L'assenza di emolisi e/o agglutinazione degli eritrociti indica la compatibilità del sangue del ricevente e del donatore.
4.2. Test di compatibilità flat a temperatura ambiente
Si applicano sulla piastra 2-3 gocce del siero del ricevente e si aggiunge una piccola quantità di eritrociti in modo che il rapporto tra eritrociti e siero sia 1:10 (per comodità si consiglia di rilasciare prima alcune gocce di eritrociti attraverso la piastra ago dal contenitore al bordo della piastra, quindi trasferire da lì con una bacchetta di vetro una piccola quantità di eritrociti (una goccia di eritrociti nel siero). Successivamente, gli eritrociti vengono miscelati con siero, la piastra viene leggermente agitata per 5 minuti, osservando il decorso della reazione. Trascorso il tempo specificato è possibile aggiungere alla miscela di reazione 1-2 gocce di soluzione fisiologica per rimuovere eventuali aggregazioni aspecifiche di eritrociti.
Contabilità dei risultati. La presenza di agglutinazione eritrocitaria significa che il sangue del donatore è incompatibile con il sangue del ricevente e non deve essere trasfuso. Se dopo 5 minuti non si verifica alcuna agglutinazione eritrocitaria, significa che il sangue del donatore è compatibile con il sangue del ricevente in termini di agglutinogeni del gruppo.
4.3. Test di Coombs indiretto
Una goccia (0,02 ml) del sedimento di eritrociti del donatore lavati tre volte viene aggiunta alla provetta, per cui una piccola goccia di eritrociti viene spremuta dalla pipetta e tocca con essa il fondo della provetta, e 4 gocce (0,2 ml) ml) del siero del ricevente vengono aggiunti. Il contenuto delle provette viene miscelato mediante agitazione, dopodiché vengono poste per 45 minuti in termostato alla temperatura di +37°C. Trascorso il tempo specificato, gli eritrociti vengono nuovamente lavati tre volte e viene preparata una sospensione al 5% in soluzione salina. Successivamente, 1 goccia (0,05 ml) di sospensione eritrocitaria su un piatto di porcellana, aggiungere 1 goccia (0,05 ml) di siero antiglobulina e mescolare con una bacchetta di vetro. La piastra viene agitata periodicamente per 5 minuti.
Contabilità dei risultati effettuata ad occhio nudo o attraverso una lente di ingrandimento. L'agglutinazione degli eritrociti indica che il sangue del ricevente e del donatore sono incompatibili, l'assenza di agglutinazione è un indicatore della compatibilità del sangue del donatore e del ricevente.
4.4. Test di compatibilità utilizzando gelatina al 10%.
Nella provetta viene aggiunta 1 piccola goccia (0,02 - 0,03) ml di eritrociti del donatore, per cui una piccola goccia di eritrociti viene spremuta dalla pipetta e tocca il fondo della provetta, 2 gocce (0,1 ml) di gelatina e 2 gocce (0,1 ml) di siero del ricevente. Il contenuto delle provette viene miscelato mediante agitazione, dopodiché viene posto a bagnomaria per 15 minuti o in un termostato per 30 minuti ad una temperatura di +46 - 48°C. Dopo il tempo specificato, alle provette vengono aggiunti 5-8 ml di soluzione fisiologica e il contenuto viene miscelato capovolgendo le provette di 1-2 volte.
Il risultato viene preso in considerazione osservando i tubi alla luce ad occhio nudo o attraverso una lente d'ingrandimento. L'agglutinazione degli eritrociti indica che il sangue del ricevente e del donatore sono incompatibili, l'assenza di agglutinazione è un indicatore della compatibilità del sangue del donatore e del ricevente.
4.5. Test di compatibilità utilizzando poliglucina al 33%.
Nella provetta vengono aggiunte 2 gocce (0,1 ml) di siero del ricevente, 1 goccia (0,05) ml di eritrociti del donatore e 1 goccia (0,1 ml) di poliglucina al 33%. La provetta viene inclinata in posizione orizzontale, agitando leggermente, quindi ruotata lentamente in modo che il suo contenuto si distribuisca sulle pareti in uno strato sottile. Tale diffusione del contenuto della provetta lungo le pareti rende la reazione più pronunciata. Il contatto degli eritrociti con il siero del paziente durante la rotazione della provetta deve essere protratto per almeno 3 minuti. Dopo 3 - 5 minuti aggiungere nella provetta 2 - 3 ml di soluzione fisiologica e miscelare il contenuto per 2 - 3 volte capovolgendo la provetta senza agitare. Il risultato viene preso in considerazione osservando i tubi alla luce ad occhio nudo o attraverso una lente d'ingrandimento. L'agglutinazione degli eritrociti indica che il sangue del ricevente e del donatore sono incompatibili, l'assenza di agglutinazione è un indicatore della compatibilità del sangue del donatore e del ricevente.
Errori nella determinazione del gruppo sanguigno, dell'affiliazione Rh e nell'esecuzione dei test di compatibilità individuale si verificano quando la tecnica di esecuzione dello studio viene violata o in caso di gruppi sanguigni difficili da rilevare.
5.1. Errori tecnici
5.2. Gruppi sanguigni difficili da identificare
5.1. Errori tecnici
5.1.1. Ordine errato dei reagenti. Con una valutazione corretta del risultato in ogni singolo reagente, è possibile trarre una conclusione errata sul gruppo sanguigno e sull'affiliazione Rh se l'ordine dei reagenti nel rack o sulla piastra viene violato. Pertanto, ogni volta che si determina il gruppo sanguigno, è necessario controllare la posizione dei reagenti, nonché valutarne visivamente la qualità, escludere l'uso di reagenti torbidi, parzialmente essiccati, reagenti con una durata di conservazione scaduta.
5.1.2. condizioni di temperatura. La determinazione del gruppo sanguigno viene effettuata a una temperatura non inferiore a 15 ° C, poiché il sangue da testare può contenere agglutinine fredde polivalenti, che causano un'agglutinazione non specifica degli eritrociti a bassa temperatura. La comparsa di agglutinazioni può creare la formazione di “pilastri”. L'aggregazione non specifica dei globuli rossi, di regola, si disintegra dopo l'aggiunta di 1-2 gocce di soluzione salina e l'oscillazione della piastra.
A temperature elevate gli anticorpi anti-A, anti-B, anti-AB perdono la loro attività, quindi la determinazione del gruppo sanguigno viene effettuata ad una temperatura non superiore a 25°C.
5.1.3. Il rapporto tra reagenti ed eritrociti studiati. Il rapporto ottimale tra eritrociti e reagenti del test per la reazione di agglutinazione è 1:10 quando si utilizzano sieri emoagglutinanti, 2 - 3:10 quando si utilizzano reagenti monoclonali (zolicloni) e reagenti preparati in combinazione con colloidi.
Con un eccesso significativo di eritrociti, l'agglutinazione potrebbe non essere notata, soprattutto nei casi in cui le proprietà di agglutinazione degli eritrociti sono ridotte - sottogruppo A 2. Con un numero insufficiente di eritrociti appare lentamente l'agglutinazione, che può anche portare ad un'errata interpretazione dei risultati nel caso di studio di eritrociti con debole agglutinazione.
5.1.4. durata dell'osservazione. L'agglutinazione degli eritrociti compare entro i primi 10 s, tuttavia il decorso della reazione deve essere monitorato per almeno 5 minuti, osservando con particolare attenzione quelle gocce in cui non si è verificata l'agglutinazione. Ciò consente di rilevare un debole agglutinogeno A 2 caratterizzato da agglutinazione ritardata.
5.2. Gruppi sanguigni difficili da identificare
5.2.1. sottogruppi sanguigni. L'antigene A contenuto negli eritrociti del gruppo A(II) e AB(IV) può essere rappresentato da due varianti (sottogruppi) - A 1 e A 2 . L'antigene B non presenta tali differenze. Gli eritrociti A2 differiscono dagli eritrociti A1 per la loro bassa capacità di agglutinazione rispetto agli anticorpi anti-A. I sottogruppi sanguigni nella trasfusiologia clinica non contano, pertanto non vengono presi in considerazione durante la trasfusione di eritrociti. Gli individui con antigene A2 possono essere trasfusi con eritrociti A1; gli individui con antigene A 1 possono essere trasfusi con eritrociti A 2. L'eccezione sono i destinatari con extra-agglutinine a 1 e a 2. Questi anticorpi non causano complicazioni post-trasfusionali, tuttavia si manifestano nel test di compatibilità individuale. In particolare, il siero del ricevente A 2 a 1 agglutina gli eritrociti A 1 su un piano o in provette a temperatura ambiente, pertanto i riceventi A 2 a 1 (II) vengono trasfusi con eritrociti 0 (I), i riceventi A 2 B (IV) vengono trasfusi con eritrociti B (III) o 0 (I).
5.2.2. Agglutinazione aspecifica degli eritrociti. Viene giudicato sulla base della capacità degli eritrociti di agglutinarsi con i sieri di tutti i gruppi, compreso AB(IV). L'agglutinazione aspecifica si osserva nell'anemia emolitica autoimmune e in altre malattie autoimmuni accompagnate dall'adsorbimento di autoanticorpi sugli eritrociti, nella malattia emolitica del neonato, i cui eritrociti sono carichi di alloanticorpi materni.
L'agglutinazione aspecifica è difficile da distinguere da quella specifica. Pertanto, in presenza di agglutinazione eritrocitaria con reagenti anti-A, anti-B, anti-AB, anti-D, è necessario condurre un test con siero standard AB(IV) e soluzione salina. In caso contrario, il ricevente può essere erroneamente assegnato al gruppo AB(IV) Rh positivo, il che porterà ad una scelta errata del donatore.
Se, a causa dell'agglutinazione aspecifica degli eritrociti, non è possibile stabilire il gruppo sanguigno del paziente, non viene emessa una conclusione sul gruppo sanguigno, il campione di sangue viene inviato a un laboratorio specializzato. In presenza di indicazioni vitali, il paziente viene trasfuso con eritrociti del gruppo 0 (I).
5.2.3. Chimere del sangue. Le chimere del sangue sono la presenza simultanea nel flusso sanguigno di due popolazioni di globuli rossi che differiscono per gruppo sanguigno e altri antigeni. Le chimere trasfusionali si verificano come risultato di ripetute trasfusioni di massa eritrocitaria o sospensione del gruppo 0 (I) a riceventi di un altro gruppo. Le vere chimere si verificano nei gemelli eterozigoti, così come dopo il trapianto allogenico di midollo osseo.
Stabilire un gruppo sanguigno nelle chimere del sangue è difficile, perché in alcuni casi, metà dei globuli rossi che circolano nel sangue hanno un gruppo sanguigno e l'altra metà ne ha un altro.
Un ricevente con una chimera sanguigna viene trasfuso con una massa o sospensione di eritrociti che non contiene antigeni contro i quali il ricevente può avere anticorpi.
5.2.4. Altre caratteristiche. La determinazione del gruppo sanguigno AB0 e dell'affiliazione Rh può essere difficile nei pazienti a causa dei cambiamenti nelle proprietà degli eritrociti in varie condizioni patologiche. Ciò può essere espresso in una maggiore agglutinabilità degli eritrociti osservata in pazienti con cirrosi epatica, con ustioni, sepsi. L'agglutinabilità può essere così elevata che gli eritrociti si uniscono nel proprio siero e nella soluzione salina. Nella leucemia si osserva una diminuzione dell'agglutinabilità degli eritrociti, a seguito della quale un numero significativo di essi rimane non coinvolto nell'agglutinazione anche quando si utilizzano reagenti standard altamente attivi (falsa chimera del sangue).
In alcuni neonati, a differenza degli adulti, gli antigeni A e B sugli eritrociti sono debolmente espressi e le corrispondenti agglutinine sono assenti nel siero del sangue.
In tutti i casi di risultati indistinti e dubbi, è necessario ripetere lo studio, utilizzando inoltre reagenti standard di una serie diversa. Se i risultati rimangono poco chiari, il campione di sangue viene inviato ad un laboratorio specializzato per l'analisi.
6. Campione biologico
Prima della trasfusione, il contenitore con il mezzo trasfusionale (massa o sospensione di eritrociti, plasma fresco congelato, sangue intero) viene rimosso dal frigorifero e mantenuto a temperatura ambiente per 30 minuti. È accettabile riscaldare il mezzo trasfusionale a bagnomaria a una temperatura di 37°C sotto il controllo di un termometro.
Un campione biologico viene effettuato indipendentemente dal volume del mezzo trasfusionale e dalla velocità della sua somministrazione. Se è necessario trasfondere più dosi di emocomponenti, prima dell'inizio della trasfusione di ogni nuova dose viene effettuato un prelievo biologico.
Tecnica di un campione biologico è la seguente: 10 ml di mezzo trasfusionale vengono trasfusi una volta alla velocità di 2–3 ml (40–60 gocce) al minuto, quindi la trasfusione viene interrotta e il ricevente viene monitorato per 3 minuti, controllando il polso, la respirazione, la pressione sanguigna, le condizioni generali, il colore della pelle, la misurazione della temperatura corporea. Questa procedura viene ripetuta altre due volte. La comparsa durante questo periodo anche di uno solo dei sintomi clinici come brividi, mal di schiena, sensazione di calore e oppressione al petto, mal di testa, nausea o vomito, richiede l'immediata interruzione della trasfusione e il rifiuto di trasfondere questo mezzo trasfusionale.
L'urgenza della trasfusione di emocomponenti non esime dall'effettuare un test biologico. Durante questo è possibile continuare la trasfusione di soluzioni saline.
Durante la trasfusione di componenti del sangue sotto anestesia, la reazione o le complicazioni incipienti sono giudicate da un aumento immotivato del sanguinamento nella ferita chirurgica, una diminuzione della pressione sanguigna e un aumento della frequenza cardiaca, un cambiamento nel colore dell'urina durante la cateterizzazione della vescica, e anche dai risultati di un test per rilevare l'emolisi precoce. In tali casi, la trasfusione di questo mezzo trasfusionale viene interrotta, il chirurgo e l'anestesista, insieme al trasfusiologo, sono obbligati a scoprire la causa dei disturbi emodinamici. Se nient'altro che la trasfusione può causarli, allora questo mezzo di emotrasfusione non viene trasfuso, la questione dell'ulteriore terapia trasfusionale viene decisa da loro, in base ai dati clinici e di laboratorio.
Un test biologico, così come un test di compatibilità individuale, è obbligatorio anche nei casi in cui viene trasfusa una massa o sospensione di eritrociti selezionati individualmente in laboratorio o fenotipizzati.
Si ricorda ancora una volta che la verifica di appartenenza al gruppo del ricevente e del donatore secondo i sistemi AB0 e Rh, nonché il test di compatibilità individuale, vengono effettuati dal trasfusiologo direttamente al letto del ricevente oppure in la sala operatoria. Solo il medico che trasfonde (ed è anche responsabile delle trasfusioni) esegue questi controlli.
È vietato introdurre nel contenitore con un componente del sangue qualsiasi altro medicinale o soluzione, ad eccezione della soluzione isotonica sterile di cloruro di sodio allo 0,9%.
Dopo la fine della trasfusione, il contenitore del donatore con una piccola quantità del mezzo di emotrasfusione rimanente e la provetta con il sangue del ricevente utilizzato per il test di compatibilità individuale devono essere conservati in frigorifero per 48 ore.
Il medico che esegue la trasfusione degli emocomponenti, per ogni trasfusione, deve registrare nella cartella clinica del paziente:
Indicazioni per la trasfusione di un componente del sangue;
Prima della trasfusione - dati del passaporto riportati sull'etichetta del contenitore del donatore contenenti informazioni sul codice del donatore, gruppo sanguigno secondo i sistemi AB0 e Rh, numero del contenitore, data di preparazione, nome dell'istituto di servizio trasfusionale, # (dopo la fine della trasfusione, l'etichetta viene staccata dal contenitore con l'emocomponente e incollata nella cartella clinica del paziente);
Il risultato del controllo del gruppo sanguigno del ricevente secondo AB0 e Rh;
Il risultato del controllo di appartenenza al gruppo del sangue o degli eritrociti prelevati dal contenitore, secondo AB0 e Rhesus;
Il risultato dei test di compatibilità individuale del sangue del donatore e del ricevente;
Il risultato di un test biologico.
Si raccomanda per ciascun ricevente, soprattutto nel caso siano necessarie trasfusioni multiple di emocomponenti, di munire, oltre alla cartella clinica del paziente, di una scheda trasfusionale (diario), nella quale siano registrate tutte le trasfusioni effettuate al paziente, il loro volume e la tollerabilità. Dopo la trasfusione, il ricevente osserva il riposo a letto per due ore e viene osservato dal medico curante o dal medico di turno. Ogni ora vengono misurate la temperatura corporea e la pressione arteriosa, fissando questi indicatori nella cartella clinica del paziente. Vengono monitorati la presenza e il volume orario della minzione e il mantenimento del normale colore delle urine. La comparsa di un colore rosso delle urine pur mantenendo la trasparenza indica un'emolisi acuta. Il giorno successivo alla trasfusione è obbligatoria un'analisi clinica del sangue e delle urine.
L'emotrasfusione è una trasfusione di sangue di un donatore (a volte proprio, precedentemente raccolto). Molto spesso non viene utilizzato il sangue intero, ma i suoi componenti (eritrociti, piastrine, plasma). La procedura ha indicazioni rigorose: grave perdita di sangue con anemia, shock. Provoca una reazione, poiché proteine estranee vengono introdotte nel corpo.
Con trasfusioni ripetute o massicce, senza sufficiente considerazione della compatibilità con il sangue del donatore, si verificano complicazioni potenzialmente letali. Scopri di più su di loro e sulle regole della trasfusione di sangue in questo articolo.
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Indicazioni per la trasfusione di sangue
A causa dell'alto rischio di distruzione degli eritrociti (emolisi), complicazioni infettive, reazioni allergiche, il sangue intero viene trasfuso in caso di perdita di sangue acuta, se è impossibile eliminare la carenza di eritrociti e plasma in altri modi. Molte più indicazioni per l'introduzione di componenti del sangue:
L'emotrasfusione e la trasfusione di componenti del sangue vengono effettuate con scopo sostitutivo ed emostatico, tale terapia ha anche un effetto stimolante e disintossicante (purificante).
Controindicazioni nei pazienti
Il sangue del donatore, anche se corrisponde per gruppo e Rh, non è un sostituto completo del tuo. Nel processo di trasfusione, parti delle proteine distrutte entrano nel corpo, creando un carico sul fegato e sui reni e un volume aggiuntivo di liquido richiede un aumento del lavoro dei vasi sanguigni e del cuore.
L'introduzione di tessuti estranei attiva i processi metabolici e la difesa immunitaria. Questo può esacerbare le malattie croniche, stimolare la crescita del tumore.
Tuttavia, la perdita acuta di sangue può salvare la vita, per cui molte delle controindicazioni alla trasfusione di sangue vengono trascurate. Con una trasfusione pianificata, la selezione dei pazienti è più rigorosa. Si sconsiglia di somministrare il sangue in presenza di:
- disturbi acuti del flusso sanguigno cerebrale e coronarico (,);
- edema polmonare;
- processo reumatico in fase attiva;
- con decorso acuto e subacuto;
- insufficienza cardiaca dallo stadio 2;
- allergie gravi;
- con complicazioni;
- tromboembolia;
- grave disfunzione renale ed epatica, glomerulonefrite acuta ed epatite;
- difetti cardiaci;
- esacerbazione dell'infezione da tubercolosi.
L’endocardite batterica è una delle controindicazioni alla trasfusione di sangue. Preparazione per una trasfusione di sangue
L'esecuzione della trasfusione di sangue comporta la preparazione del paziente, l'esame della qualità del sangue, la determinazione del gruppo e dell'affiliazione Rh del sangue del donatore e del paziente, e il medico deve assicurarsi che siano compatibili tra loro.
Algoritmo dell'azione del medico
Innanzitutto, il medico chiede al paziente se ha ricevuto trasfusioni di sangue in passato e la sua tolleranza. Nelle donne, è necessario sapere se si è verificata una gravidanza con un conflitto Rhesus. Successivamente, dovrebbero essere determinate le indicazioni per la trasfusione di sangue e le possibili limitazioni dovute a comorbilità.
Regole infusioni di sangue da un donatore a un paziente (ricevente):
- Per prima cosa è necessario determinare il gruppo e l'affiliazione Rh del sangue del paziente.
- Selezionare la corrispondenza completa del donatore in base a questi parametri (gruppo singolo e singolo Rhesus).
- Verificare l'idoneità.
- Effettuare un esame del sangue del donatore utilizzando il sistema ABO.
- Utilizzare i test di compatibilità ABO e Rh per determinare l'idoneità all'infusione.
- Esegui un test biologico.
- Eseguire la trasfusione di sangue.
- Documentare la trasfusione e la risposta del paziente ad essa.
Valutazione dell'idoneità del sangue
Il sangue in arrivo per la trasfusione deve essere valutato secondo i seguenti criteri:
- sull'etichetta è presente l'indicazione del gruppo necessario e dell'appartenenza Rh;
- il componente corretto o il sangue intero sono selezionati correttamente;
- la data di scadenza non è scaduta;
- la confezione presenta segni di tenuta;
- il sangue è suddiviso in tre strati ben visibili: giallo superiore (plasma), grigio medio (piastrine e leucociti), rosso inferiore (eritrociti);
- la parte plasmatica è trasparente, non contiene scaglie, filamenti, pellicole, coaguli, né una tinta rossa dovuta alla distruzione degli eritrociti.
Marcatura del sangue e suoi componenti Test di compatibilità donatore-destinatario
Per assicurarsi che il paziente non abbia anticorpi che possano essere diretti contro i globuli rossi del donatore, viene eseguito un test speciale: un test con antiglobulina. Per lei, il siero del paziente e i globuli rossi del donatore vengono portati nella provetta. La miscela risultante viene centrifugata, viene esaminata per rilevare segni di distruzione e agglutinazione (incollaggio) degli eritrociti.
Se in questa fase non viene rilevata alcuna incompatibilità, procedere alla seconda parte: l'aggiunta del siero antiglobulina.
Solo il sangue che non presenta segni visivi di emolisi o formazione di coaguli è idoneo alla trasfusione. Questa tecnica a due fasi è universale, ma oltre ad essa sono necessari tali test di compatibilità:
- per gruppo: siero del paziente e una goccia di sangue del donatore (10:1);
- per Rh - con una soluzione al 33% di poliglucina, gelatina al 10%;
- Test di Coombs indiretto: gli eritrociti del donatore lavati con soluzione salina e il siero del paziente vengono posti in un termostato per 45 minuti, quindi vengono miscelati con siero antiglobulina.
Con un risultato negativo di tutti i test (non si è verificata agglutinazione degli eritrociti), procedere alla trasfusione. Dopo aver collegato il sistema, al paziente vengono infusi 10 ml di sangue di un donatore per tre volte (con un intervallo di tre minuti) e viene valutata la sua tolleranza.
Questo campione è chiamato biologico e il suo risultato dovrebbe essere l'assenza di:
- fiato corto;
- un forte aumento della frequenza cardiaca;
- vampata di calore;
- arrossamento della pelle;
- dolore nell'addome o nella regione lombare.
Metodi trasfusionali
Se il sangue proviene direttamente dal donatore al paziente, questa tecnica è chiamata diretta. Richiede una strumentazione speciale, poiché è necessaria un'iniezione a getto per evitare pieghe. È usato molto raramente. In tutti gli altri casi, dopo aver prelevato il sangue del donatore, viene elaborato e quindi conservato fino alla trasfusione di sangue.
Il sangue viene trasfuso mediante somministrazione endovenosa, quello intraarterioso viene utilizzato per lesioni estremamente gravi. A volte è necessario un metodo intraosseo o intracardiaco. Oltre al solito (indiretto), esistono tipi speciali: reinfusione, scambio e autotrasfusione.
Guarda un video sulla trasfusione di sangue:
reinfusione
In caso di lesioni o interventi chirurgici, il sangue entrato nella cavità corporea (addominale, torace) viene raccolto e filtrato dall'apparecchio, quindi iniettato nuovamente nel paziente. Il metodo è indicato per perdite di sangue superiori al 20% del volume totale, gravidanza ectopica con sanguinamento, interventi chirurgici estesi sul cuore, grandi vasi, nella pratica ortopedica.
Le controindicazioni sono le infezioni, l'incapacità di purificare il sangue.
Autoemotrasfusione
Il sangue del paziente viene pre-preparato prima dell'intervento chirurgico o in caso di grave emorragia durante il parto. Questo metodo presenta vantaggi significativi, poiché il rischio di infezioni e reazioni allergiche è ridotto, gli eritrociti introdotti attecchiscono bene. L’uso dell’autodonazione è possibile in tali situazioni:
- intervento chirurgico esteso pianificato con una perdita del 15% del volume sanguigno;
- terzo trimestre di gravidanza con necessità di taglio cesareo;
- gruppo sanguigno raro;
- il paziente non è d'accordo a donare il sangue;
- età da 5 a 70 anni;
- condizioni generali relativamente soddisfacenti;
- assenza di anemia, astenia, infezione, stato pre-infartuale.
Autoemotrasfusione Scambio di trasfusioni di sangue
Il sangue viene parzialmente o completamente rimosso dal flusso sanguigno e al suo posto viene introdotto il sangue del donatore. Viene utilizzato per l'avvelenamento, la distruzione (emolisi) dei globuli rossi in un neonato, l'incompatibilità del sangue per gruppo, Rh o composizione antigenica in un bambino e una madre (immediatamente dopo il parto). Viene spesso utilizzato il primo giorno di vita nei bambini con livelli elevati di bilirubina e diminuzione dell'emoglobina inferiore a 100 g / l.
Caratteristiche nei bambini
In un bambino, prima di una trasfusione di sangue, è necessario stabilire il proprio gruppo e Rh, così come questi indicatori nella madre. Gli eritrociti del neonato vengono testati con un test di Coombs per verificarne la compatibilità con le cellule del donatore. Se la madre e il neonato hanno lo stesso gruppo e fattore Rh, per la diagnosi è possibile prelevare il siero materno.
Per i bambini, vengono eseguiti test per rilevare gli anticorpi che il neonato ha ricevuto dalla madre durante lo sviluppo fetale, poiché l'organismo non li produce fino a 4 mesi. Se si riscontra incompatibilità con gli eritrociti del donatore o in caso di anemia emolitica, viene prelevato il primo gruppo sanguigno del donatore oppure la massa eritrocitaria del plasma del gruppo 0 (I) e AB (IV).
Che cos'è la "sindrome da trasfusione massiccia di sangue"
Se a un paziente viene iniettato sangue al giorno in una quantità pari al suo volume, ciò aumenta significativamente il carico sul sistema cardiovascolare e sui processi metabolici. A causa della presenza simultanea di una grave condizione iniziale e di un'abbondante trasfusione di sangue del donatore, spesso si verificano complicazioni:
- uno spostamento dell'acidità del sangue verso il lato acido (acidosi);
- eccesso di potassio durante la conservazione a lungo termine del sangue del donatore (più di 7 giorni), particolarmente pericoloso per i neonati;
- diminuzione del calcio dovuta a intossicazione da citrati (conservanti);
- aumento della concentrazione di glucosio;
- sanguinamento dovuto alla perdita di fattori della coagulazione e di piastrine nel sangue immagazzinato;
- anemia, diminuzione del numero di leucociti, proteine;
- sviluppo (formazione di microtrombi nei vasi) con successivo blocco dei vasi polmonari;
- diminuzione della temperatura corporea, poiché il sangue del donatore proviene dai frigoriferi;
- , bradicardia, arresto cardiaco;
- emorragie petecchiali, sanguinamento renale e intestinale.
Per prevenire la sindrome da trasfusione massiccia, è necessario utilizzare sangue fresco quando possibile, riscaldare l'aria nella sala operatoria, monitorare e regolare costantemente i principali indicatori della circolazione sanguigna, del coagulogramma e della composizione del sangue del paziente. Il ripristino della perdita di sangue deve essere effettuato con l'aiuto di sostituti del sangue in combinazione con globuli rossi.
Possibili complicazioni dopo una trasfusione di sangue
Immediatamente dopo la trasfusione o durante le prime ore, quasi tutti i pazienti reagiscono all'introduzione di brividi di sangue, febbre, mal di testa e dolori muscolari, pressione toracica, dolore nella regione lombare, mancanza di respiro, nausea, prurito ed eruzioni cutanee . Regrediscono dopo la terapia sintomatica.
Con insufficiente compatibilità del sangue individuale o violazione delle regole della trasfusione di sangue, si verificano gravi complicazioni:
- shock anafilattico - soffocamento, caduta di pressione, tachicardia, arrossamento del viso e della parte superiore del corpo;
- espansione acuta del cuore dovuta al sovraccarico delle sezioni giuste - mancanza di respiro, dolore al fegato e al cuore, bassa pressione arteriosa e alta venosa, arresto delle contrazioni;
- l'ingresso di aria o di un coagulo di sangue in una vena e poi nell'arteria polmonare, seguito da un blocco, si manifesta con dolore toracico acuto, tosse, pelle blu e stato di shock. Con lesioni più piccole si verifica un infarto polmonare;
- intossicazione da potassio e citrato - ipotensione, ridotta conduzione del miocardio, convulsioni, depressione respiratoria e contrazioni cardiache;
- shock da emotrasfusione con incompatibilità del sangue: si verifica una massiccia distruzione dei globuli rossi, un calo della pressione e un'insufficienza renale acuta.
Perché la trasfusione di sangue è considerata doping negli atleti
Nella medicina dello sport viene utilizzata la tecnica dell'autoemotrasfusione. Per fare ciò, prima della competizione, il sangue viene prelevato dagli atleti in anticipo (2-3 mesi prima) e viene elaborato, gli eritrociti vengono isolati e congelati. Prima della somministrazione, la massa dei globuli rossi viene scongelata e combinata con soluzione salina.
L'efficacia di tale procedura per aumentare le prestazioni e la resistenza è associata a diversi motivi:
Tuttavia, l'autoemotrasfusione ha anche conseguenze negative. Sono associati alla tecnica trasfusionale e alla possibilità di blocco dei vasi sanguigni, aumento della densità del sangue, rischio di sovraccarico della metà destra del cuore e reazione ai conservanti. L'introduzione dei propri globuli rossi e di uno stimolatore della loro formazione (eritropoietina) è considerata doping, ma è estremamente difficile rilevarli durante le analisi negli atleti.
Se si fa uso a lungo termine di anticoagulanti, il sanguinamento non è raro. Esiste una certa scala di rischio che aiuterà a calcolare la probabilità del suo sviluppo sullo sfondo dell'uso di farmaci.
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