La reazione di Pandy è positiva, questo è quello che dice. Metodi di laboratorio

La reazione di Pandy è positiva, questo è quello che dice.  Metodi di laboratorio

119. Pandey e Nonne - Reazioni di Apelt

Come reagente per l'effettuazione della reazione di Pandey si utilizza un liquido surnatante limpido, che si ottiene agitando vigorosamente 100 g di acido fenico liquido con 1000 ml di acqua distillata. Per ottenere un precipitato e un liquido limpido (reagente), questa miscela viene prima posta in termostato per 3-4 ore, quindi mantenuta a temperatura ambiente per 2-3 giorni.

Posizionare un orologio o un vetrino su carta scura e applicare su di esso 2-3 gocce di reagente, quindi 1 goccia di liquido cerebrospinale. Quando la goccia diventa torbida o appare una torbidità filamentosa lungo la sua periferia, la reazione è considerata positiva.

Per eseguire la reazione Nonne-Apelt sono necessarie provette pulite, una soluzione satura di solfato di ammonio, acqua distillata e carta scura. Una soluzione satura di solfato di ammonio si prepara come segue: in un pallone da 1000 ml si mettono 0,5 g di solfato di ammonio neutro chimicamente puro, quindi si versano 100 ml di acqua distillata riscaldata a 95 ° C, si agita fino a completa dissoluzione del sale e si lascia per diversi giorni a temperatura ambiente. Dopo 2-3 giorni si filtra la soluzione e si determina il pH. La reazione deve essere neutra.

0,5-1 ml della soluzione risultante vengono versati nella provetta e la stessa quantità di liquido cerebrospinale viene aggiunta con cautela lungo la parete della provetta. Dopo 3 minuti, valutare il risultato. La comparsa di un anello biancastro indica una reazione positiva. Quindi il contenuto della provetta viene agitato, il grado di torbidità viene determinato confrontandolo con una provetta contenente acqua distillata. I risultati della reazione vengono valutati sullo sfondo della carta nera.

120. Reazione Bordet-Jangu

Un prezioso test diagnostico per l'individuazione della gonorrea cronica tra individui affetti da malattie infiammatorie croniche del sistema genito-urinario. Secondo la letteratura, con l'uso corretto di questo metodo, viene rilevato fino all'80% dei casi di gonorrea non rilevati con metodo batterioscopico o batteriologico.

La reazione di Bordet-Jangu può essere una traccia di una precedente malattia o dell'uso di un gonovaccino a scopo diagnostico (metodo di provocazione immunobiologica), nonché terapeutico (trattamento dei processi infiammatori cronici del sistema genito-urinario nelle donne secondo Baksheev) scopo. Pertanto, prima di effettuarlo, è necessario raccogliere attentamente un'anamnesi,

La reazione può anche essere falsa positiva con l'introduzione del latte, l'uso di pirogeni per scopi medicinali.

Pertanto, una reazione Bordet-Jangu positiva non serve come prova indiscutibile della presenza di infezione gonococcica, così come una reazione negativa non può essere prova dell'assenza di gonorrea. Tuttavia, i suoi risultati positivi per lungo tempo dovrebbero indirizzare il medico a cercare il focus dell'infezione gonococcica nel corpo.

Come antigene viene utilizzata una coltura gonococcica uccisa, contenente 3-4 miliardi di corpi microbici per 1 ml. L'antigene gonococcico viene conservato con una soluzione di formaldeide e versato in fiale da 1-5 ml. Le fiale non aperte sono adatte per 6 mesi, aperte possono essere conservate per 2-3 giorni in una provetta sterile in frigorifero a una temperatura di 3-5 ° C,

La reazione di fissazione del complemento di Borde-Zhang viene eseguita in modo simile alla reazione di Wasserman (vedi n. 121). L'antigene gonococcico viene diluito con una soluzione isotonica di cloruro di sodio secondo il titolo indicato sull'etichetta della fiala. La reazione viene spesso eseguita in un volume di 2,5 ml, pertanto, a 0,5 ml di siero di prova diluito 1: 5, 0,5 ml di antigene diluito vengono aggiunti a ciascuna provetta. I restanti 1,5 ml sono 1 ml del sistema emolitico e 0,5 ml di complemento.

La reazione è considerata positiva se è presente un ritardo dell'emolisi espresso in varia misura nel siero in esame. Nel controllo (siero sanguigno di persone sane) si osserva un'emolisi completa.

121. Reazione di Wasserman

Nel siero dei pazienti affetti da sifilide sono presenti reagine e anticorpi. Le reagine hanno la capacità di entrare in composti con l'antigene cardiolipina. Anticorpi specifici contro Treponema pallidum si combinano con antigeni specifici. I complessi antigene-anticorpo risultanti vengono assorbiti dal complemento aggiunto alla reazione. L'indicazione viene effettuata introducendo un sistema emolitico (eritrociti di pecora + siero emolitico).

Perché avvenga la reazione:

a) soluzione isotonica di cloruro di sodio;

b) antigeni treponemici ultrasonificati (conservati in frigorifero a +4 °C) e cardiolipina (conservati a temperatura ambiente);

c) complemento, che è il siero sanguigno ottenuto mediante puntura cardiaca di 5-10 cavie sane. Può essere conservato in frigorifero fino a 2 mesi a condizione
conservazione con soluzione di acido borico al 4% e soluzione di solfato di sodio al 5%;

d) emolisina - siero emolitico di coniglio immunizzato con eritrociti di pecora a diverso titolo (conservato in frigorifero alla temperatura di 4°C);

e) eritrociti di pecora, ottenuti mediante puntura della vena giugulare. Il sangue viene raccolto in un barattolo sterile con perle di vetro (per la miscelazione), agitato per 15 minuti. I coaguli di fibrina vengono separati mediante filtrazione attraverso garza sterile. Il sangue defibrinato può essere conservato in frigorifero per un massimo di 5 giorni.

A volte è necessaria una conservazione più lunga del sangue di pecora, e quindi viene conservato con un conservante speciale (6 g di glucosio, 4,5 g di acido borico, 100 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio), che viene fatto bollire a bagnomaria per 20 minuti al giorno per 3 giorni Per 100 ml di sangue di pecora defibrinato sono necessari 15 ml di conservante. Il sangue defibrinato così conservato viene conservato in frigorifero.

L'esperimento principale è preceduto da diverse fasi.

    Al paziente vengono prelevati 5-10 ml di sangue dalla vena cubitale e il siero viene processato. Nei bambini, il sangue può essere prelevato dalla vena temporale o da un'incisione nel tallone. La puntura viene effettuata con strumenti sterili, una siringa e un ago
    prelavato con soluzione isotonica di cloruro di sodio.

Il sangue per la ricerca viene prelevato a stomaco vuoto; 3-4 giorni prima dello studio, al paziente è vietato l'uso di farmaci, preparati digitalici e l'assunzione di alcol.

Non si deve condurre uno studio in pazienti con temperatura corporea elevata, dopo traumi, interventi chirurgici, anestesia, malattie infettive recenti, in donne durante le mestruazioni, in donne incinte (negli ultimi 10 giorni di gravidanza), donne in travaglio (nei primi 10 giorni dopo il parto) e anche i neonati (nei primi 10 giorni di vita).

Il sangue ottenuto in una provetta sterile viene posto per 15-30 minuti in un termostato ad una temperatura di 37 °C. Il coagulo risultante viene separato dalle pareti della provetta con una bacchetta di vetro sterile e posto in frigorifero per un giorno. Il siero trasparente separato (sopra il coagulo) viene aspirato con una pipetta Pasteur utilizzando una pera di gomma o versato con cautela in un'altra provetta sterile e inattivato a bagnomaria per 30 minuti ad una temperatura di 56 °C. Il siero preparato in questo modo per l'esperimento può essere conservato in frigorifero fino a 5-6 giorni.

    Gli antigeni vengono diluiti secondo il metodo e il titolo indicati in etichetta.

    Preparare il sistema emolitico. Per fare ciò si centrifuga sangue defibrinato o eritrociti di pecora nella quantità necessaria alla reazione, si separa accuratamente il plasma e si lava il precipitato con 5-6 volumi di soluzione isotonica di cloruro di sodio fino a quando il surnatante diventa completamente incolore. Dal sedimento viene preparata una sospensione di eritrociti al 3% in una soluzione isotonica di cloruro di sodio secondo un titolo triplo.

Una soluzione di siero emolitico e una sospensione di eritrociti di pecora vengono miscelate rapidamente e poste in termostato per 30 minuti.

    Il complemento secco viene diluito con una soluzione isotonica di cloruro di sodio in un rapporto di 1:10, siero umano normale inattivato - 1:5.

Il complemento viene titolato in 30 provette posizionate in un rack da 10 provette su 3 file. In due file viene titolato in presenza di due antigeni, nella terza con soluzione isotonica di cloruro di sodio. Cinque provette sono di controllo: due per i due antigeni corrispondenti e una ciascuna per il controllo del complemento, del siero emolitico e della soluzione isotonica di cloruro di sodio per l'emotossicità; compilateli così:

Reagenti ml

Fila di provette

Sospensione al 3% di eritrociti di pecora

siero emolitico,

diluito per triplo titolo

Complemento 1:10

Antigene triponemico diluito per titolo

Antigene della cardiolipina diluito per titolo

Soluzione isotonica di cloruro di sodio

Le provette vengono poste in un termostato per 45 minuti, dopodiché vengono controllate. L'emolisi non dovrebbe essere presente in nessuna provetta.

Il complemento con una diluizione di 1:10 viene versato in 10 provette della 1a fila del rack in dosi: 0,1, 0,16, 0,2,0,24, 0,3, 0,36,0,4,0,44, 0,5 e 0,55 ml. Al contenuto di ciascuna provetta aggiungere una soluzione isotonica di cloruro di sodio fino a 1 ml e mescolare accuratamente. 0,25 ml della miscela da ciascuna provetta vengono trasferiti nelle corrispondenti provette della 2a e 3a fila. Si agita il portaprovette con le provette, si aggiungono 0,5 ml del sistema emolitico alla 3a fila di provette, si agita nuovamente e si pone per 45 minuti in un termostato alla temperatura di 37 °C. Siero di sangue umano normale diluito con soluzione isotonica di cloruro di sodio in un rapporto di 1:5, 0,25 ml vengono versati in tutte le 30 provette.

Antigene I (ultrasuono treponemico), diluito a titolo con soluzione isotonica di cloruro di sodio, 0,25 ml vengono aggiunti a 10 provette della 1a fila; antigene II (cardiolipina nella stessa diluizione e nella stessa quantità) - in 10 provette della 2a fila. 0,25 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio vengono versati in 10 provette della 3a fila, i restanti 0,25 ml vengono versati. Dopo l'incubazione in termostato, 0,5 ml del sistema emolitico vengono aggiunti a 20 provette (1a e 2a fila), agitate e poste nuovamente in termostato per 45 minuti.

Dopo 45 minuti, viene determinata la dose di lavoro del complemento, ovvero il suo titolo con una tolleranza compresa tra il 15 e il 20%.

Il titolo del complemento è considerato la sua quantità minima, causando l'emolisi completa degli eritrociti di montone in presenza dell'antigene e del siero di sangue umano normale.

L'esperienza principale è che ciascun siero inattivato testato, diluito in un rapporto di 1: 5 con una soluzione isotonica di cloruro di sodio, viene versato in 0,25 ml in tre provette. Aggiungere 0,25 ml di antigene I alla prima provetta, 0,25 ml di antigene II alla seconda e 0,25 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio alla terza (controllo). Aggiungere in tutte le provette 0,25 ml di complemento diluito alla dose di lavoro. Tutte le provette vengono poste in termostato per 45 minuti, quindi vengono aggiunti 0,5 ml del sistema emolitico, agitate e poste in termostato per 45-50 minuti. Il risultato dell'esperimento viene registrato dopo l'inizio dell'emolisi completa nelle provette di controllo.

I risultati della reazione vengono valutati con vantaggi: ritardo completo nell'emolisi (reazione fortemente positiva) ++++, significativo (reazione positiva) +++, parziale (reazione debolmente positiva) ++, insignificante (reazione dubbia) - ±, nessun ritardo nell'emolisi (reazione negativa) - .

Con il metodo quantitativo di esecuzione della reazione Wasserman, l'esperimento viene eseguito con volumi decrescenti di siero diluito con soluzione isotonica di cloruro di sodio.

Schema per condurre l'esperienza principale della reazione Wasserman

Ingredienti (in ml). Volume totale 1,25ml

N. di tubi

Il siero del test è inattivato, diluito 1:5

Antigene I (treponemico), diluito

per titolo Antigene II (cardiolipina), diluito per titolo

Soluzione isotonica di cloruro di sodio

Complemento, diluito secondo la dose di lavoro

Il significato clinico della reazione di Wasserman è difficile da sopravvalutare. Viene eseguito su tutti i pazienti prima dell'inizio del trattamento, ma è di particolare importanza per la sifilide latente, i danni agli organi interni e al sistema nervoso.

I risultati della reazione Wasserman caratterizzano la qualità del trattamento, che dà motivo di cancellare i pazienti trattati entro un certo periodo di tempo.

Nella sifilide primaria la reazione di Wasserman è solitamente positiva alla fine della sesta settimana dal momento dell'infezione; con la sifilide fresca secondaria, è positivo in quasi il 100% dei casi, con recidiva secondaria - nel 98-100%; terziario attivo - nell'85%; terziario nascosto - nel 60% dei casi.

La reazione Wasserman viene eseguita due volte per tutte le donne incinte, i pazienti con malattie somatiche, nervose, mentali e della pelle, nonché per i contingenti decretati della popolazione. Allo stesso tempo, i risultati positivi e debolmente positivi della reazione dovrebbero essere trattati in modo critico, poiché possono verificarsi alla fine della gravidanza e dopo il parto, con ipertiroidismo, malaria, lebbra, decadimento di un tumore maligno, malattie infettive, collagenosi, ecc. Pertanto, in presenza di manifestazioni cliniche della malattia, queste dovrebbero essere prese in considerazione, insieme ai dati della batterioscopia, in primo luogo.

Allo stesso tempo, ci sono fattori che possono distorcere la vera natura dei risultati della reazione Wasserman: vetreria da laboratorio scarsamente lavata (tracce di acidi e alcali nelle provette), conservazione a lungo termine del sangue prelevato per la ricerca, consumo di grassi e alcol da parte dei pazienti prima dell'esame, del periodo mestruale, ecc.

In tutti i casi, è auspicabile condurre un esame completo del paziente, includendo, oltre alla reazione di Wassermann, anche la RIBT (vedi 122, 123, 124), ecc.

122. Reazione di Sachs - Vitebsky (citocolico)

Utilizzato per rilevare la sifilide. Si basa sulla formazione di un precipitato quando il siero del sangue del paziente viene miscelato con un antigene.

Per preparare l'antigene, i muscoli di diversi cuori bovini vengono puliti da tendini, fasce, grasso, tritati in un tritacarne ed estratti con un volume di 5 volte di etanolo al 96% per 15 giorni con agitazione quotidiana di 20 minuti. L'estratto ottenuto viene evaporato a bagnomaria in una tazza di porcellana sotto vuoto. Al residuo (massa di lipidi giallo brillante) viene aggiunto alcol etilico caldo al 96% nella quantità di 1/3 del volume dei muscoli prelevati per l'estrazione.

L'estratto si conserva per 3 giorni a temperatura ambiente, si filtra (in acqua fredda) e si aggiunge una soluzione allo 0,3-0,6% di colesterolo cristallino, a seconda dei risultati della titolazione con sieri positivi e negativi. Conservare l'antigene citocolico a temperatura ambiente in fiale sigillate o provette sigillate.

Metodologia. A 2 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio, 1 ml di antigene del citocolo viene rapidamente versato e lasciato a temperatura ambiente per 15 minuti fino alla comparsa dei fiocchi. Aggiungere 0,1 ml di emulsione antigenica a 0,2 ml di siero inattivato, agitare per 3 minuti e lasciare agire per 30 minuti, quindi aggiungere 1 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio.

Nella provetta di controllo con l'antigene vengono aggiunti 1,2 ml di soluzione isotonica di cloruro di sodio e 0,1 ml di emulsione antigenica. Non dovrebbero esserci scaglie nel controllo. I risultati della reazione vengono presi in considerazione visivamente o con una lente d'ingrandimento e sono indicati in base alla quantità di scaglie cadute con vantaggi (++++, +++, ++). Con una reazione negativa non si formano scaglie, ma il contenuto del tubo può essere leggermente opalescente.

Nel 1931 P. Sachs ed E. Witebsky proposero una modifica di questa tecnica, che consiste nel diluire l'antigene in due fasi: 2 parti di una soluzione isotonica di cloruro di sodio vengono aggiunte a 1 parte dell'antigene, tenuto a temperatura ambiente per 5 minuti e si aggiungono altre 9 parti di una soluzione isotonica di cloruro di sodio. Si consiglia inoltre di diluire l'antigene con una soluzione di cloruro di sodio al 2% che, secondo gli autori, aumenta la sensibilità della reazione. È anche possibile una modifica quantitativa della reazione con diluizione del siero (1:4, 1:8, 1:16, 1:32, 1:64, ecc.).

La reazione è abbastanza sensibile, richiede un po' di tempo (circa 1 ora) e i risultati vengono letti immediatamente.

123. Reazione di immobilizzazione del treponema pallido (RIBT)

Con l'aiuto di una reazione nel siero del sangue di pazienti con sifilide, vengono rilevati anticorpi e complemento che immobilizzano il treponema pallido.

Con la sifilide primaria, il RIBT è prevalentemente negativo, con secondario - positivo nel 92-96% dei casi, con terziario - nel 92-100%, con sifilide del sistema nervoso e congenita - nell'86-89% dei casi.

Risultati positivi del RIBT sono stati notati nella sarcoide, nell'eritematosi, nel diabete, nei tumori maligni, nell'epatite virale, nella cirrosi epatica, nella malaria, nella lebbra, nella mononucleosi infettiva e in alcune malattie dei paesi tropicali (pinta, framboesia, ecc.).

L'antigene è una sospensione di treponema pallido prelevata dai testicoli di un coniglio infetto da sifilide introducendo nel testicolo 0,75-1 ml di una sospensione di treponema pallido in soluzione isotonica di cloruro di sodio (50 individui per campo visivo).

Il materiale testicolare deve essere prelevato 6-8 giorni dopo l'infezione dell'animale. Prima di assumere l'antigene, il coniglio viene macellato mediante dissanguamento (puntura del cuore o dell'arteria carotide). Il tessuto testicolare viene frantumato e riempito con siero di sangue di coniglio sano diluito con una soluzione isotonica di cloruro di sodio, agitato per -30 minuti e quindi centrifugato per 10 minuti (1000 giri al minuto). Il surnatante viene esaminato al microscopio. Dovrebbero essere presenti almeno 10-15 treponemi pallidi in ciascun campo visivo.

Il complemento viene preparato nel solito modo dal sangue delle cavie.

Per RIBT sono necessari: 1,2 ml di soluzione di gelatina allo 0,2%, 2,8 ml di soluzione di albumina al 5%, 1,6 ml di sospensione di treponema pallido; pH medio - 7,2. A questa miscela si aggiungono 0,15 ml di complemento (cocktail). In parallelo, vengono messi due campioni: con complementi attivi (esperimento) e reattivi (controllo).

Il siero studiato viene raccolto nei melangeur fino alla tacca “1”, quindi si raccoglie il cocktail fino alla tacca “2” e si chiudono con un anello di gomma sterile.

Allo stesso tempo, una reazione simile viene eseguita con sieri ovviamente positivi e ovviamente negativi.

I melanger vengono numerati e posti in un termostato alla temperatura di 35°C per 18-20 ore, dopodiché vengono tolti a coppie (esperimento - controllo) dal termostato e il contenuto viene versato nelle apposite provette. 2 gocce vengono applicate sul vetrino: a sinistra - esperienza, a destra - controllo, coperto con un vetrino coprioggetto e microscopico in un campo visivo buio.

Innanzitutto vengono studiati i risultati del controllo: viene determinata la percentuale di treponemi pallidi mobili e immobili. Formula di conteggio: X = (A - B) / A * 100, dove A è il numero di treponemi pallidi mobili nel controllo; B - il numero di treponemi pallidi mobili nell'esperimento.

Esempio: (24 - 19) / 24 * 100 = 21%.

Stime dei risultati del RIBT: inferiore al 20% - negativo. 21-30% - dubbio, 31-50% - debolmente positivo, oltre il 50% - positivo.

Gli studi diagnostici di laboratorio in psichiatria mirano a valutare lo stato somatico del paziente, monitorandolo durante il trattamento e identificando le malattie somatiche che causano disturbi mentali. La maggior parte dei metodi di laboratorio utilizzati in psichiatria non differiscono da quelli della medicina somatica generale. Tuttavia, esistono una serie di metodi specifici con i quali è possibile effettuare una diagnosi eziologica "in vitro" con grande precisione. Questi includono le reazioni colloidali utilizzate per diagnosticare la sifilide, il rilevamento di disturbi del metabolismo degli aminoacidi nell'oligofrenia, la determinazione del contenuto di stupefacenti nei mezzi biologici e la determinazione del livello di farmaci psicotropi nel sangue per monitorare il trattamento.

I. Determinazione del contenuto di sostanze psicoattive nelle urine.

Serve per accertare l'avvenuta assunzione di sostanze psicoattive e, in caso di accertamenti ripetuti, per accertarne l'abuso e la dipendenza del paziente. Il tempo durante il quale queste sostanze possono essere rilevate dopo l'ultima dose varia da alcune ore a un mese. Il tempo approssimativo durante il quale il farmaco può essere rilevato nelle urine è riportato nella tabella:

Sostanze

Tempo

Alcol

Barbiturici

24 h (azione non prolungata)

3 settimane (azione prolungata)

Benzodiazepine

6-8 ore (metaboliti - 2-4 giorni)

Marijuana

3 giorni - 4 settimane (a seconda della frequenza d'uso)

Metaqualone

Fenilciclidina

propossifene

II. Le principali reazioni del liquido cerebrospinale.

La reazione di Pandey

Metodo di determinazione si basa sulla determinazione del grado di torbidità del liquido cerebrospinale quando viene aggiunto ad una soluzione al 15% di acido carbolico. Alcune gocce del reagente di Pandey e 1-2 gocce di liquido cerebrospinale vengono applicate su un vetrino. Quando vengono mescolati, appare una torbidità di varia gravità (a seconda della quantità di proteine ​​contenute nel liquido cerebrospinale). Il risultato viene determinato su uno sfondo scuro dopo 2 minuti. Il grado di torbidità è indicato da più (+, ++, +++, ++++) o (secondo il sistema SI) numeri (1,2,3).

valore diagnostico. Fornisce un'idea generale del contenuto proteico nel liquido cerebrospinale, non essendo un test specifico per la globulina.

Reazione di non appello.

Metodo di determinazione basato sulla precipitazione di globuline con una soluzione satura di solfato di ammonio. Una quantità uguale di liquido cerebrospinale viene stratificata in una provetta contenente 0,5-1,0 ml del reagente. Dopo 2 minuti appare un anello bianco al confine delle soluzioni. Quindi il tubo viene agitato e viene determinato il grado di torbidità, esprimendolo con vantaggi. La torbidità appare già con un contenuto proteico di 0,033 g/l.

valore diagnostico. Dà un'idea relativa del contenuto normale o patologico delle globuline, il cui numero è particolarmente aumentato nelle malattie infiammatorie degenerative e croniche.

Reazione di Lang(con oro colloidale)

Metodo di determinazione. Quando il liquido cerebrospinale patologico viene aggiunto a una soluzione colloidale altamente dispersa di cloro-oro, si verifica la coagulazione, le particelle precipitano e il colore della soluzione cambia. A ciascuna delle dieci provette contenenti liquido cerebrospinale in varie diluizioni (1:10, 1:20, 1:40, ecc.) vengono aggiunti 2,5 ml di una soluzione colloidale. Il risultato si osserva dopo un giorno. Con il liquido cerebrospinale normale, il colore della soluzione rimane rosso in tutte le provette (nella 3a-5a provetta è possibile solo una leggera diminuzione della sua intensità). In condizioni patologiche, il colore cambia, il cambiamento di colore è stimato dai numeri 0 - rosso, 1 - rosso-viola, 2 - viola, 3 - blu-viola, 4 - blu, 5 - blu, 6 - bianco.

valore diagnostico. Esistono curve normali, degenerative (cambiamento di colore nella metà sinistra della riga - osservato nella sifilide, tumori, sclerosi multipla), infiammatorie (cambiamento di colore nella metà destra della riga - osservato nella meningite) e tipi misti (cambiamento di colore nelle parti sinistra e centrale della fila si osservano lesioni miste meningo-parenchimali).

I principali parametri fisici e chimici del liquido cerebrospinale lombare: incolore, trasparente, pH = 7,4-7,6, proteine ​​totali - 0,22-0,33 g/l, albumine - 46,6-52,8‰, globuline - 53,4-47,2‰, fibrinogeno - 0,0019-0,0030 g/l, urea - 1,0-3,3 mmol/ l, glucosio - 2,5-4,44 mmol/l, colesterolo - 0,002-0,011 mmol/l, azoto totale - 11,4-15,7 mmol / l, azoto residuo - 8,6-13,6 mmol / l.

III. Determinazione del contenuto di farmaci psicotropi nel plasma. Ha senso pratico in quei casi in cui esiste una relazione quasi lineare tra il contenuto del farmaco nel plasma nell'effetto terapeutico e dove è nota la "finestra terapeutica", cioè l'intervallo di concentrazione in cui il farmaco ha la massima azione effetto terapeutico. Utilizzato per preparati al litio e alcuni antidepressivi triciclici nel trattamento dei disturbi dell'umore.

Determinazione del contenuto di litio: il sangue viene prelevato 12 ore dopo l'ultima assunzione del farmaco all'interno (di solito al mattino dopo l'assunzione serale); la frequenza delle determinazioni all'inizio del trattamento - 1-2 volte a settimana, dopo aver impostato la dose - 1 volta al mese. Per la terapia di mantenimento del disturbo affettivo bipolare è necessaria una concentrazione di 0,6-1,0 mg-eq / l, per il sollievo degli stati maniacali - 1,0-1,5 mg-eq / l.

Antidepressivi triciclici: "finestra terapeutica" per imipramina (melipramina) - 200-250 ng / ml, triptisolo (amitriptilina) - 120-250, nortriptilina - 50-150, desipramina (petilil) - 125-250 ng / ml.

parallelamente all’aumento dell’incidenza complessiva della sifilide, aumenta la percentuale dei casi di neurosifilide.

Secondo le istruzioni per il trattamento e la prevenzione della sifilide, lo studio del liquido cerebrospinale deve essere effettuato prima del trattamento in pazienti con sifilide latente precoce e tardiva in presenza di lesioni cliniche del sistema nervoso, nonché in forme latenti e tardive della neurosifilide.

Si effettuano esami liquorologici in fase di cancellazione:

(1 ) pazienti il ​​cui trattamento era stato iniziato per neurosifilide precoce e tardiva;

(2 ) persone che, nel corso del controllo clinico e sierologico, presentano manifestazioni cliniche di una specifica lesione del sistema nervoso (meningite sifilitica acuta, sifilide meningovascolare, meningomielite sifilitica, tabe dorsale, gomma sifilitica, neurite e polineurite sifilitica, danno sifilitico al dei nervi visivi, danno sifilitico ai nervi uditivi, meningomielite sifilitica, paralisi progressiva);

(3 ) persone con resistenza sierologica che persiste entro la fine del periodo di osservazione clinica e sierologica.

Il liquido cerebrospinale per la ricerca viene ottenuto mediante puntura lombare tra le vertebre lombari III e IV o IV e V utilizzando aghi da puntura lunghi e sottili (da 0,4 a 0,8 mm di diametro e 10-12 cm di lunghezza). Il liquore 3-4 ml viene raccolto in due provette sterili (non più di 8-10 ml). È necessario assicurarsi che il liquido fuoriesca e che la cannula scenda (20-40 gocce al minuto). Se il liquido, dopo aver rimosso il mandrino dall'ago, fuoriesce in un flusso, il mandrino deve essere immediatamente reinserito a una profondità ridotta per regolare la velocità di deflusso del fluido.

Se le prime gocce di liquido cerebrospinale sono macchiate di sangue, la posizione dell'ago deve essere modificata (avanzare più in profondità o leggermente esteso). Quindi il liquido limpido viene raccolto in un'altra provetta (una porzione del liquido cerebrospinale mescolato con sangue non viene esaminata).

Dopo la puntura, il sito della puntura viene trattato con tintura di iodio al 3-5% e viene applicata una benda sterile. Per evitare complicazioni, il paziente viene adagiato sul letto a pancia in giù (la pediera del letto è sollevata di 20-30 cm). Dopo 3-4 ore gli è permesso di girarsi su un fianco. Il riposo a letto viene osservato per 24-48 ore. Si consiglia al paziente di bere molti liquidi e di avere fame per 6-8 ore dopo la puntura.

Viene inviata una porzione di liquido cerebrospinale (3-4 ml). al laboratorio clinico e biochimico per lo studio della citosi, del contenuto proteico, della produzione di globulina (Pandi, Nonne-Appelt, Weichbrodt o Takata-Ara) e delle reazioni colloidali (Lange o paraffina).

Reazione Non-Apelt. Con l'aiuto di una soluzione satura di solfato di ammonio, si forma un anello proteico al confine del contatto del reagente con il liquido cerebrospinale. Dopo lo scuotimento e, conseguentemente, la miscelazione dei liquidi, si ottengono opalescenze o torbidità di varia intensità. La reazione Nonne-Apelt viene valutata secondo un sistema a quattro punti: debolmente positivo (+) - l'opalescenza è leggermente evidente, moderatamente positiva (++) - leggera torbidità, positiva (+++) - torbidità pronunciata e nettamente positiva (+ +++) - opacizzazione intensa. Ross-Jones ha modificato leggermente questa reazione. Propose di non mescolare il liquido cerebrospinale con una soluzione satura di solfato di ammonio, ma di versarlo con cura dall'alto da una pipetta in gocce su un reagente più concentrato. Inoltre, il liquido cerebrospinale viene preparato in vari gradi di diluizione. Dopo 3 minuti, viene determinato il grado di torbidità dell'anello formato all'interfaccia tra liquidi e soluzione di solfato di ammonio. Un anello di opalescenza si forma quando il contenuto proteico nel liquido cerebrospinale è ad una concentrazione di 3 g/L.

La reazione di Pandey precipita non solo le globuline, ma anche tutte le proteine ​​del liquido cerebrospinale. Consiste nel fatto che sul vetro dell'orologio, posto su uno sfondo scuro, vengono applicate 10-15 gocce di una soluzione al 10% di acido fenico, quindi una goccia di liquido cerebrospinale. La reazione è altamente sensibile ed è determinata dall'intensità della torbidità che si forma nel punto di contatto tra il liquido e il reagente dopo 3 minuti.

Reazione di Weinbrocht Viene prodotto in modo tale che 3 parti di una soluzione allo 0,1% di nitrato d'argento vengano aggiunte a 7 parti del liquido cerebrospinale e quindi agitate. Allo stesso tempo, si verifica torbidità di vario grado, in base alla quale viene giudicato il contenuto di sostanze proteiche (non solo globuline).

Reazione di Takata-ara. reazione colloidale. Quando si aggiungono soluzioni sublimate e fucsina al liquore alcalinizzato, si osserva normalmente una miscela di colore viola. Quando il liquido diventa limpido e si forma un precipitato, la reazione viene definita metasifilitica (paralisi progressiva), se colorata in rosso, come meningite.

Reazione di Lang basato sulla capacità del liquido cerebrospinale patologicamente alterato, quando miscelato con soluzioni colloidali, di modificare la dispersione della soluzione e quindi il suo colore; con il normale liquido cerebrospinale, il colore rosso porpora della soluzione non cambia. In patologia si distinguono diversi tipi di curve di cambiamento di colore. Il primo tipo è paralitico: con gradi gradualmente crescenti di scissione del liquido cerebrospinale nelle provette, lo scolorimento si verifica solo nelle prime 5 provette con un ritorno alla normalità piuttosto ripido. Questo decorso della reazione è caratteristico della paralisi progressiva. Per altre forme di neurosifilide, un dente sifilitico è più caratteristico: uno scolorimento moderato nella 2-5a provetta. Il secondo tipo di curva è meningitica (meningite acuta): si osserva un cambiamento di colore a partire dalla 2a o 3a tuba, raggiunge un massimo nella 6a e 7a tuba, dopodiché ritorna bruscamente alla normalità. In altre malattie del sistema nervoso centrale, la reazione di Lange è abbastanza tipica e non può servire come strumento diagnostico ausiliario.

Viene inviata la seconda porzione di liquore (3-4 ml). al laboratorio sierologico per la reazione Wasserman con antigeni cardiolipina e treponemali, RIF e RIBT.

Reazione di Wassermann(reazione di fissazione del complemento, RSK) con antigeni treponemici e cardiolipina vengono utilizzati per confermare la diagnosi di sifilide in presenza di manifestazioni attive della malattia, per esaminare persone che sono state in stretto contatto con un paziente affetto da sifilide, per identificare forme latenti (nascoste ) sifilide, l'efficacia della terapia. Quando si esaminano pazienti in ospedali psichiatrici e neurologici. Donatori e donne incinte, comprese le persone indirizzate all'interruzione artificiale della gravidanza.

Il sangue per la ricerca viene prelevato in una quantità di 5-7 ml dalla vena cubitale con un ago sterile. Nei neonati, il sangue viene prelevato dalla vena temporale o da incisioni sul tallone. Il prelievo di sangue viene effettuato rigorosamente a stomaco vuoto. E lasciarlo in provette pulite e asciutte per 2-3 ore a temperatura ambiente per coagulare. L'impostazione della CSR e delle reazioni specifiche viene effettuata nei laboratori sierologici delle istituzioni dermatovenerologiche.

Il principio dell'RSK è che le reazioni trovate nel siero dei pazienti affetti da sifilide hanno la capacità di unirsi a composti con vari antigeni. I complessi risultanti smistano il complemento introdotto nella reazione. Un sistema emolitico (una miscela di eritrociti di montone con siero emolitico) viene utilizzato per indicare il complesso reagina-antigene-complemento. In presenza del complesso gli eritrociti precipitano. Il che è evidente ad occhio nudo. La gravità dell'emolisi è indicata dal medico con i tasti: nettamente positivo 4+, positivo 3+, debolmente positivo 2+ o 1+ e negativo. Oltre alla valutazione qualitativa di queste reazioni, esiste anche una valutazione quantitativa, importante nella diagnosi di alcuni stadi della sifilide e nel monitoraggio dell'efficacia della terapia.

Attualmente si consiglia di utilizzare come antigeni l'antigene cordilipil (un estratto dal cuore di un toro arricchito con colesterolo e lecitina) e l'antigene triponemico (una sospensione ultrasonica di treponemi culturali apatogeni). La reazione di fissazione del complemento con cardiolipina e antigeni treponemici diventa positiva dopo 2-4 settimane, aumenta gradualmente e raggiunge un massimo (1:160 - 1:320 e oltre) con sifilide secondaria fresca. Successivamente il titolo delle reazioni diminuisce gradualmente e nella sifilide secondaria ricorrente di solito non supera 1:180 - 1:120. tra i pazienti con sifilide terziaria, queste reazioni danno un risultato positivo solo nel 70%.

Va sottolineato che i CSR non sono strettamente specifici per la sifilide e in alcuni casi possono dare risultati falsi positivi (non specifici), possono essere ottenuti a causa di errori tecnici (emolisi completa, prelievo di sangue non sterile, qualificazione insufficiente del laboratorio assistenti). Si osservano false reazioni in pazienti affetti da lebbra, malaria, a volte con malattie situazionali, neoplasie, tubercolosi, malattie del fegato, durante l'assunzione di farmaci e anche durante la gravidanza. Durante le mestruazioni, ecc. Non è consigliabile esaminare il sangue durante la prima settimana dopo la vaccinazione, lesioni, interventi chirurgici, con condizioni febbrili durante le prime 2 settimane dopo la nascita, nei neonati nei primi 10 giorni di vita, perché. i cambiamenti fisico-chimici nel siero del sangue in queste condizioni possono essere simili a quelli osservati nei pazienti con sifilide.

Barriera corallina basato su un metodo indiretto per la determinazione degli anticorpi fluorescenti. L'antigene in questa reazione è una sospensione di treponemi pallidi in coltura uccisi, fissati su vetrini su cui vengono applicati il ​​test e i sieri fluorescenti anti-specie. I risultati del RIF vengono determinati al microscopio a fluorescenza valutando la luminescenza del treponema nella preparazione. Con un risultato positivo, i treponemi hanno un bagliore verde-giallastro, il cui grado è indicato da più da 1+ a 4+; con risultati negativi, i treponemi non si illuminano. RIF è attualmente installato in diverse modifiche (RIF - abs, RIF - 200).

RIBT, proposto nel 1949 da R. Nelson e M. Meyer, si basa sul fenomeno dell'immobilizzazione del treponema pallido da parte degli antigeni del siero del paziente in presenza di complemento. Come antigene per RIBT viene utilizzata una sospensione di treponema vivo pallido ottenuto da conigli infetti da sifilide. I treponemi immobilizzati vengono contati al microscopio. I risultati delle reazioni vengono valutati in percentuale dallo 0 al 20% - negativo, dal 21 al 31% - dubbio, dal 31 al 50% - debolmente positivo, dal 51 al 100% - positivo. Il RIBT diventa positivo alla fine del periodo primario della sifilide a e rimane tale durante tutti i periodi di questa malattia, e talvolta anche dopo un trattamento antisifilide completo. Il RIBT può dare risultati falsi positivi se il siero del test contiene sostanze treponemiche (antibiotici - penicillina, tetraciclina) che causano l'immobilizzazione aspecifica dei treponemi pallidi. Pertanto, è impossibile esaminare il sangue per questa reazione prima di 2 settimane dopo la fine degli antibiotici.

Per l'esecuzione di reazioni sierologiche specifiche (RIF e RIBT), il sangue viene prelevato dalla vena cubitale a stomaco vuoto nella quantità di 5-10 ml. Dopo la sterilizzazione, la siringa e l'ago vengono lavati con una soluzione isotonica di cloruro di sodio e il sangue viene versato in una provetta asciutta per il test RIF e in una provetta sterile per il test RIB. La dichiarazione di reazioni sierologiche specifiche alla sifilide viene effettuata in laboratori specializzati di istituti cutanei e venerei.

I risultati dello studio liquorologico vengono valutati secondo la scala Robustov, integrato con i dati più recenti su RIF e RIBT con liquido cerebrospinale. Secondo questa classificazione, ci sono quattro gradi di cambiamenti nel liquido cerebrospinale nei pazienti affetti da sifilide.

Mi laureo- cambiamenti minori isolati o combinati nel liquido cerebrospinale.

I cambiamenti nel liquido cerebrospinale sono considerati insignificanti quando: citosi di più di 8 cellule per 1 mm3, proteine ​​superiori allo 0,33%, reazioni di Nonne-Apelt (++), reazione di Pandey (+++), reazione di Lange più di due o una tripla , RV debolmente positivo, RIF positivo.

Se viene rilevato uno di questi cambiamenti, si parla di cambiamenti isolati nel liquido cerebrospinale, se due sono combinati. molto spesso vengono rilevati prima del trattamento in pazienti con sifilide primaria e secondaria, neurosifilide vascolare, in alcuni pazienti che hanno recentemente completato il trattamento con neurosifilide, nonché in alcuni pazienti dopo il periodo di osservazione di controllo.

II grado- variazioni significative del liquido cerebrospinale con risultati negativi di RV e RIBT.

Esiste una dissociazione proteina-cellula (la citosi rientra nell'intervallo normale o leggermente aumentata, la quantità di proteine ​​è notevolmente aumentata, le reazioni colloidali della globulina sono positive) o cellula-proteina (pleocitosi e un leggero aumento delle proteine, Pandey e Nonne-Appelt reazione sono debolmente positive o negative).

Tali cambiamenti si riscontrano più spesso in pazienti con varie forme cliniche di meningite sifilitica, sifilide meningovascolare.

III grado- cambiamenti bruschi nel liquido cerebrospinale (dissociazione cellula-proteina o proteina-cellula, le reazioni globuline sono più spesso positive) e risultati positivi di RV, RIBT e RIF.

Viene determinato nei pazienti con meningite sifilitica avanzata, latente o acuta, precoce, sifilide meningovascolare, neurosifilide mesenchimale tardiva e in alcuni pazienti con tabe dorsale.

IV grado- alterazioni di tipo paralitico nel liquido cerebrospinale: elevata pleocitosi o elevato contenuto proteico, reazioni globuline, RV, RIF, RIBT sono positivi, la curva di Lange è di tipo paralitico.

Tali cambiamenti nel liquido cerebrospinale sono più caratteristici dei pazienti con paralisi progressiva, taboparalisi, in misura minore - per i pazienti con tabe dorsale e in misura ancora minore - per i pazienti con neurosifilide mesenchimale tardiva.

Bilirubinarchia emorragica ( xantocromia) è causata dall'ingresso di sangue negli spazi liquorali, il cui decadimento porta alla colorazione del liquido cerebrospinale in rosa, poi in arancio, giallastro, giallo, giallo intenso. Inoltre, il liquore può essere giallo caffè, marrone e marrone. Queste varianti della colorazione del liquido cerebrospinale sono dovute ai prodotti di degradazione dell'emoglobina eritrocitaria e di diverse forme di emoglobina. Il colore xantocromico appare con l'ittero; tumori cerebrali ricchi di vasi sanguigni e vicini allo spazio del liquido cerebrospinale; cisti; somministrazione subaracnoidea di grandi dosi di penicillina; nei neonati questa colorazione è di natura fisiologica.

colore rosso(eritrocromia) fornisce sangue inalterato al liquido cerebrospinale, che può apparire a seguito di traumi, emorragie.

Buio-ciliegia o fondente-colore marrone possibile con ematomi e ingestione di liquido cerebrospinale dalle cisti.

Torbidità del liquido cerebrospinale dipende da un aumento significativo del numero di elementi cellulari (eritrociti, leucociti, elementi cellulari dei tessuti), batteri, funghi e da un aumento del contenuto proteico. Il liquido cerebrospinale è descritto nella forma: liquido cerebrospinale completamente trasparente, opalescente, leggermente torbido, torbido, nettamente torbido.

pellicola di fibrina Normalmente, il liquido cerebrospinale non contiene praticamente fibrinogeno. La comparsa di fibrinogeno nel liquido cerebrospinale è dovuta a malattie del sistema nervoso centrale che causano una violazione della BBB. La formazione di un film fibrinoso è provocata in vitro dalla conversione del fibrinogeno in fibrina. Nel liquido cerebrospinale si forma una pellicola fibrinosa con un contenuto molto elevato di fibrinogeno e si presenta come una pellicola delicata sulle pareti di una provetta, una sacca contenente liquido cerebrospinale con elementi cellulari.

Aumento delle proteine ​​nel liquido cerebrospinale può essere con meningite tubercolare, purulenta, sierosa, disturbi emodinamici, dopo un intervento chirurgico al cervello, con un tumore al cervello, poliomielite, lesione cerebrale con emorragia subaracnoidea, nefrite con uremia. Nell'infiammazione acuta aumentano le α-globuline, nell'infiammazione cronica aumentano le β e γ-globuline. Un aumento delle proteine ​​​​nel liquido cerebrospinale in vari processi patologici dipende da disturbi emodinamici nei vasi cerebrali, che portano ad un aumento della permeabilità delle loro pareti e all'ingresso di molecole proteiche del plasma sanguigno nel liquido cerebrospinale. La proteina viene determinata mediante reazione con acido solfosalicilico al 3%.

Reazioni positive di Pandey e Nonne-Apelt indicano un aumento del contenuto della frazione globulina e accompagnano emorragie cerebrali, tumori cerebrali, meningiti di varia origine, paralisi progressiva, tabe dorsale, sclerosi multipla. Una miscela con il liquido cerebrospinale dà sempre reazioni globuline positive.

Concentrazione di glucosio nel liquido cerebrospinale per varie malattie si riflette nella tabella. 3-13. La causa dell'ipoglicoarchia è l'aumento della glicolisi, il trasporto alterato attraverso la barriera ematoencefalica, l'aumento dell'uso del glucosio da parte delle cellule, in particolare dei leucociti.


Pleocitosi- un aumento del numero di cellule nel liquido cerebrospinale. Una leggera pleocitosi è possibile con sifilide, meningite specifica, aracnoidite, encefalite, sclerosi multipla, epilessia, tumori. Una massiccia pleocitosi si osserva nella meningite purulenta acuta, nell'ascesso. I risultati dello studio del liquido cerebrospinale in vari tipi di meningite sono riportati nella tabella. 3-15.

La pleiocitosi linfocitaria si osserva nel periodo postoperatorio durante interventi neurochirurgici, infiammazione cronica delle meningi (meningite tubercolare), meningoencefalite virale, sifilitica, fungina. Una pleocitosi moderata con predominanza di linfociti è possibile con la localizzazione del processo patologico nelle profondità del tessuto cerebrale.

Neutrofili immutati si osservano quando il sangue fresco entra nel liquido cerebrospinale durante le operazioni al cervello, con infiammazione acuta; neutrofili alterati - con l'attenuazione del processo infiammatorio. La combinazione di neutrofili invariati e alterati indica un'esacerbazione dell'infiammazione. Una comparsa acuta di una grande pleocitosi neutrofila è possibile quando un ascesso irrompe negli spazi del liquido cerebrospinale. Nella poliomielite all’esordio della malattia predominano i neutrofili, seguiti dai linfociti.

Gli eosinofili vengono rilevati nelle emorragie subaracnoidee, nella meningite tossica, reattiva, tubercolare, sifilitica, epidemica, nei tumori cerebrali.

Le plasmacellule si trovano nell'encefalite, nella meningite tubercolare, nella lenta guarigione delle ferite dopo l'intervento chirurgico.

I macrofagi vengono rilevati nella citosi normale dopo il sanguinamento e nel processo infiammatorio. Un gran numero di macrofagi nel liquido cerebrospinale può essere rilevato durante la sua pulizia nel periodo postoperatorio. La loro assenza nella pleocitosi è un segno prognostico sfavorevole. I macrofagi con goccioline di grasso nel citoplasma (palline granulari) sono presenti nel liquido delle cisti cerebrali e in alcuni tumori.

Le cellule epiteliali si determinano con neoplasie delle membrane, talvolta con un processo infiammatorio.

Cellule di tumori maligni possono essere trovate nel liquido cerebrospinale del cervello con metastasi di cancro e melanoma nella corteccia cerebrale, nelle regioni sottocorticali, nel cervelletto; blasti - con neuroleucemia.

Gli eritrociti compaiono nel liquido cerebrospinale con emorragie intracraniche (in questo caso, non è tanto il loro numero assoluto che conta, ma l'aumento durante esami ripetuti).

Lo studio del liquido cerebrospinale, il liquido cerebrospinale è uno dei test più comuni utilizzato con successo per rilevare la presenza di una varietà di malattie neurologiche.

La reazione di Pandy è un metodo per studiare il liquido cerebrospinale, utilizzato per la prima volta dal neurologo e specialista di salute mentale ungherese Kalman Pandy nel 1910. Da allora, è stato ampiamente utilizzato in medicina, poiché consente di rilevare in modo accurato e affidabile la presenza di processi patologici nel midollo spinale o nel cervello.

Caratteristiche della tecnica

La reazione di Pandey è un metodo di ricerca che consente di determinare il livello elevato di globuline (proteine) nel liquido cerebrospinale.

L'acido fenico è usato come reagente chimico. Al contatto dell'acido carbolico e del liquido cerebrospinale si formano aree di torbidità, mentre l'intensità della torbidità dipende direttamente dalla quantità di proteine ​​presenti nel liquido cerebrospinale.

Normalmente, il liquido cerebrospinale umano è trasparente. La torbidità del liquido cerebrospinale si verifica con un aumento della concentrazione di leucociti, globuline, eritrociti in esso contenuti, presenza di vari microrganismi. Una maggiore concentrazione di questi elementi indica processi infiammatori, patologie del cervello o del midollo spinale e disturbi vascolari.

Condurre lo studio e interpretare i risultati

Come risultato della puntura lombare, viene prelevato il liquido cerebrospinale, che funge da materiale di partenza per la reazione.

Per la ricerca viene utilizzato un vetro concavo, sotto il quale è posta la carta nera. Come reagente viene utilizzata una soluzione di acido fenico, preparata nella seguente proporzione: 1 parte di acido fenico cristallizzato in 15 parti di acqua distillata.

1 ml viene fatto gocciolare nella parte centrale del vetrino. acido fenico concentrato, una goccia di CSF viene applicata al centro o lungo i bordi del reagente. È possibile applicare 2 gocce di liquido cerebrospinale, ma è importante osservare la proporzione di 1 goccia di liquido cerebrospinale: 1 ml. soluzione.

Se la reazione di Pandey nel liquido cerebrospinale è positiva, nei punti di contatto tra i due fluidi si forma un'area di torbidità, la cui intensità dipende dalla quantità di proteine ​​nel liquido cerebrospinale.

La gravità della reazione viene interpretata utilizzando croci. Quindi, una croce “1+” significa debole opalescenza ed è una variante della norma, oppure indica un basso contenuto di globuline nel liquido cerebrospinale (poco più di 0,2 g / l).

Il risultato "2+" è un'opalescenza evidente e "3+" è una foschia moderata. "4+" significa grave torbidità, che indica un aumento significativo della quantità di globuline nel liquido cerebrospinale.

Il test di Pandey è simile alla reazione di Nonne-Apelt, con l'unica differenza che è necessaria una quantità minore di liquido cerebrospinale per eseguire la reazione di Pandey.

Cosa indica una risposta positiva?

Un livello elevato di globuline nel liquido cerebrospinale può essere il risultato di purulenta, tubercolosi o indicare un recente intervento chirurgico al cervello, un ascesso o. Allo stesso tempo, più "croci" si osservano in base ai risultati del test, più pronunciati sono i cambiamenti, i disturbi nel midollo spinale o nel cervello.

Se nel liquido cerebrospinale sono presenti impurità del sangue, il test di Pandey risulterà sempre positivo. Ecco perché si osserva una reazione positiva con disturbi emodinamici nel sistema vascolare.

La violazione dell'emodinamica porta al fatto che le pareti dei vasi sanguigni diventano facilmente permeabili e il plasma sanguigno con una componente proteica entra nel liquido cerebrospinale. C'è un test Pandi positivo.

La reazione di Pandey è un test qualitativo, che indica la presenza di un'aumentata concentrazione di proteine ​​nel liquido cerebrospinale. Per chiarire la diagnosi e determinare più chiaramente la quantità di globuline nel sangue, vengono utilizzati altri metodi di ricerca più informativi e moderni.





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